實驗準備——取材
| 組織來源 | 操作步驟 |
| 皮膚和粘膜 | 主要取皮片，面積一般2~4平方厘米。 |
| 血液細胞 | 一般多抽取靜脈外周血或從淋巴組織中(如脾扁桃體、胸腺、淋巴結等)分離細胞取材時應注意抗凝。 |
| 雞(鴨)鳥類胚胎組織 |
1.取孵化至適當杯齡(9~12天)的胚蛋，用照蛋燈在暗處燈檢，若有豐富血管，胚體有運動的胚蛋，說明胚體發育良好，并用有色筆劃出氣室和胚體位置。 |
| 內臟和實體瘤 |
1.無菌環境。 |
| 骨暗、羊水、胸/腹水細胞 | 嚴格無菌，注意抗凝，還要盡快分離培養，離心后，用無鈣、鎂PBS洗兩次，再用培養液洗一次后即可培養，不宜低溫存放。 |
|
動物組織取材: 鼠胚組織 |
1.用引頸或氣管窒息致死法處死孕期合適的動物。 |
|
動物組織取材: 幼鼠胚腎(或肺) |
幼鼠采用上述方法處死消毒后，腹部朝上固定在木板上先切開游離毛皮并拉開至兩側，采用無菌法打開胸腔取肺，或從背部打開腹腔取腎。 |
?
?組織塊培養法
1. 組織塊接種后的前3天，在觀察和移動的過程中，注意不要引起液體的振蕩。要避免經常翻動和振動，否則組織塊不易附著于瓶壁上或附著后也會脫落飄起。
2. 加入的培養液不宜過多，避免浸泡的組織塊受輕微的波動而脫落下來。
3. 當細胞向外遷徙出來后要注意記錄并去除漂浮的組織塊和殘留的細胞，它們產生的有毒物質會影響原代細胞的生長。
4. 為促進組織塊盡快粘貼在培養瓶皿上，可以在種植前先將膠原薄層涂在培養瓶底壁上。
?
? 貼壁型原代細胞
1. 原代培養的分離細胞在初次接觸體外環境時，它們之間會互相影響，在這些細胞之間能產生一些促生長的活性物質，使細胞彼此互相促進存活和生長。如果接種的細胞密度過低，細胞之間的促生長作用很小，也很難使細胞適應從體內的組織環境到被分散后進入獨立生存環境的變化過程。如果接種的細胞密度過大，會導致營養物質供應不足，代謝廢物積累較快需要經常換液和傳代。
2. 適當增大原代培養接種的細胞密度，給培養的細胞提供更多的類似于在體內時細胞之間的相互作用，會極大提高原代培養的細胞在體外存活率。待細胞適應體外環境后進行傳代培養時再以較低的密度接種和培養。
3. 盡快使接種的細胞貼壁，是決定培養能否成功的關鍵。可以在接種后先將培養瓶置培養箱內培養3h到5h，待細胞貼壁后，再補足培養液繼續培養。
?
?懸浮型原代細胞
1. 必須保持細胞的懸浮狀態。可以通過增加培養液的黏度來幫助細胞呈懸浮狀態，如給培養液中加入低濃度的透明質酸復合物。在有攪拌裝置的培養器皿內加入培養液，以5ml為最低限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快，否則即可使培養液溢出又容易造成污染。如果培養液的量在5ml以下，可以采用旋轉瓶培養。給懸浮培養的細胞換液時要注意不要吸出細胞。
2. 能夠進行懸浮培養的細胞，其生命力一般都比較旺盛，體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大，換液時間隔一般較短。
原代細胞培養問題
?
? 原代細胞與細胞系有什么區別？
1.根據傳統定義，自組織第一次收獲和接種的細胞被稱為原代細胞。這類細胞直接從組織分離，生命周期有限，經數次傳代后會逐漸停止生長。原代細胞在有限的生命周期內需掌握好細胞的最大生長空間，以保持細胞群中基因型和表型的一致性。
細胞系是不斷生長、分化的細胞群，因其經過遺傳改造，致使其具有無限增長的潛能。體外生長的細胞系用于醫療或科研。
但實際上，經過長時間、連續的傳代培養后，細胞系隨著代數的增加，細胞的基因型和表型都有可能發生改變。
需要指出的是，在不同的科研小組中這些術語的定義會有所不同。許多研究員不用細胞系這個詞表示細胞群，除非細胞經過了遺傳改造。
2. 能夠進行懸浮培養的細胞，其生命力一般都比較旺盛，體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大，換液時間隔一般較短。
?
? 倍增和代數有什么區別？
倍增是培養物中細胞總數的翻倍，通常是指細胞指數或對數生長期。代數是指細胞群從培養瓶中移出，傳代培養過程的次數，傳代培養的目的，是使細胞處于低密度以刺激其進一步生長。
?
? 接收到的凍存細胞該如何處理？
收到包裝箱后，立即將凍存細胞從干冰移入液氮中凍存。此過程盡量快，以避免升溫。不要將細胞儲存在-80℃，這樣會對細胞造成不可挽回的傷害。
?
? 凍存的細胞該如何開始培養？
1. 將一管細胞從液氮罐中取出，注意保護手和眼睛。
2. 將凍存管快速的放入37℃水浴中，輕輕握住并旋轉，直到管內物體完全融化。
3. 將凍存管立即從水浴中拿出，擦干，轉入無菌環境。
4. 用70％的酒精沖洗凍存管，然后擦去多余酒精。
5. 打開蓋子，注意手指不要碰到里面的螺紋（注意，由于凍存管有負壓，開蓋時可能會有少量溢出，這是正常現象）。
6. 用多聚賴氨酸（或參照說明書）包被培養瓶。多數細胞推薦的接種密度為每平方厘米5000個細胞。
7. 蓋好培養瓶的蓋子，輕輕搖晃培養瓶以使細胞分布均勻。若需要氣體交換可打開蓋子。
8. 將培養瓶放入培養箱中（37℃，5%CO2，95%空氣）
9. 放入培養箱后第6-16小時更換一次培養基，以去除殘留的二甲基亞砜和未貼壁的細胞。
?
? 細胞培養過程中，多久更換一次培養基？
這取決于細胞生長的速度。一般而言2-3天更換一次培養基，許多細胞培養實驗室通常在周一，周三，周五更換培養基。
注意：凍存細胞復蘇后，在6-16小時內更換培養基，以去除殘留的二甲基亞砜和死亡的細胞。
?
?我能擴增培養和再次凍存原代正常人類細胞嗎？
這取決于細胞的類型。
一些細胞類型像神經細胞，神經膠質細胞和一些生長緩慢的上皮細胞，不推薦擴增培養和再次凍存。
其它的細胞類型像成纖維細胞、星形細胞、腎系膜細胞、星形膠質細胞等等，可以擴增培養和再次凍存。
然而，需要注意的是再次凍存的過程可能導致細胞生長性能的改變。
?
? 培養瓶中應該加入多少體積的培養基？
我們推薦的用量為：
Nest T-25培養瓶5mL
T-75培養瓶15mL
T-225培養瓶50mL
