透析已成為生物化學實驗室簡便常用的分離純化技術之一。在生物大分子的制備過程中，除鹽、除少量有機溶劑、除生物小分子雜質和濃縮樣品等都要用到透析的技術。
透析只需要使用專用的半透膜即可完成。通常是將半透膜制成袋狀，將生物大分子樣品溶液置入袋內，將此透析袋浸入水或緩沖液中，樣品溶液中的大分子量的生物大分子被截留在袋內，而鹽和小分子物質不斷擴散透析到袋外，直到袋內外兩邊的濃度達到平衡為止。保留在透析袋內未透析出的樣品溶液稱為“保留液”，袋（膜）外的溶液稱為“滲出液”或“透析液”。
透析的動力是擴散壓，擴散壓是由橫跨膜兩邊的濃度梯度形成的。透析的速度反比于膜的厚度，正比于欲透析的小分子溶質在膜內外兩邊的濃度梯度，還正比于膜的面積和溫度，通常是4℃透析，升高溫度可加快透析速度。
透析膜可用動物膜和玻璃紙等，但應用多的還是用纖維素（再生纖維素RC、纖維素酯CE、PVDF等）制成的透析膜，截留分子量（Molecular weight CutOff）（即留在透析袋內的生物大分子的小分子量，縮寫為MwCO）有100、500、1000、2000、3500、8000、10000、15000、20000、25000、50000、100000、250000、500000、1000000等種類，單位為道爾頓（D）。
商品透析袋制成管狀，其扁平寬度為8 mm～77 mm不等。為防干裂，出廠時都用10%的甘油處理過，并含有極微量的硫化物、重金屬和一些具有紫外吸收的雜質，它們對蛋白質和其它生物活性物質有害，用前必須除去。因此新買的透析袋在使用前需經過前處理。
前處理方法：
1.將透析管剪成適當長度（10-20cm）的小段，即成透析袋。
2.在大體積的2%（m/v）碳酸氫鈉和1mmol/L EDTA（pH=8）中將透析袋煮沸10 min。
3.將透析袋用蒸餾水徹底漂洗。
4.將透析袋置1mmol/LEDTA（pH=8）中煮沸10 min。
5.透析袋冷卻后存放于4度，應確保透析袋始終浸沒在液體中。
注：從此步起用透析袋時一定要戴手套操作。
6.在使用之前要用蒸餾水將透析袋里外加以清洗。
注：也可以將透析袋放在廣口瓶中充滿水，松動瓶蓋，于20psi（1.40 kg/cm2）高壓滅菌10 min，代替第四步用1mmol/LEDTA（pH=8）中煮沸10 min的操作。
新透析袋如不作如上的特殊處理，則可用沸水煮五至十分鐘，再用蒸餾水洗凈，即可使用。
美國光譜醫學公司生產的透析袋大部分是預處理過的，即用型，使用前只需用蒸餾水沖洗即可使用，spectra/por7系列和生物技術級的透析袋基本不含硫化物和重金屬離子。
使用方法：
選用透析袋需要知道目的物質的分子量，每次處理的樣品量，同一批次的平行試驗，是否需要保持目的物質的活性來選擇。
使用時，一端用橡皮筋或線繩扎緊，也可以使用特制的透析袋夾夾緊，由另一端灌滿水，用手指稍加壓，檢查不漏，方可裝入待透析液。通常要留三分之一至一半的空間，以防透析過程中，透析的小分子量較大時，袋外的水和緩沖液過量進入袋內將袋漲破。含鹽量很高的蛋白質溶液透析過夜時，體積增加50％是正常的。為了加快透析速度，除多次更換透析液外，還可使用磁子攪拌。透析的容器要大一些，可以使用大燒杯、大量筒和塑料桶。小量體積溶液的透析，可在袋內放一截兩頭燒圓的玻璃棒或兩端封口的玻璃管，以使透析袋沉入液面以下。
檢查透析效果的方法是：用1% BaCl2檢查(NH4)2SO4，用1% AgNO3檢查NaCl、KCl等。
為了提高透析效率，還可以使用各種透析裝置。使用者也可以自行設計與制作各種簡易的透析裝置。美國美國光譜醫學公司生產的各種型號的透析設備，由于使用對流透析的原理，使透析速度和效率大大提高。
使用后的透析袋處理：
使用后的透析袋經適當的處理后，可重復使用，避免浪費。
1.保存前可用生/理鹽水浸泡除去蛋白，并用蒸餾水清洗干凈，洗凈后置于50%乙醇中保存即可。
2.用蒸餾水徹底洗干凈，可存于4℃蒸餾水中，若長時間不用，可加少量NaN2，以防長菌。
3.洗凈涼干的透析袋彎折時易裂口，用時必須仔細檢查，不漏時方可重復使用。