注: PE 和 APC 的完整操作步驟及標記方案在最后兩頁,如果不需要看介紹,可直接跳過
藻 紅 蛋 白 (R-PE 及 B-PE)
特 點 :
1.從紅藻中純化
2.具有極高的發射量子產率
3.熒光團與蛋白質主鏈共價結合,不被淬滅
4.高水溶性
R-PE 與 B-PE 的 區 別 :


Wavelength (nm) Wavelerngn (mm)
R-PE 與 B-PE 的 對 比 :
|
|
R-PE |
B-PE |
|
分子量 |
240,000 |
240,000 |
|
最大吸收 |
565 nm |
545 nm |
|
額外的吸收峰 |
498 nm |
564nm |
|
最大發射 |
573 nm |
573 nm |
|
消光系數(ε) |
1.96x106 M-1cm-1 |
2.41x106 M-1cm-1 |
|
熒光量子產率(QY) |
0.84 |
0.98 |
|
吸收比 |
A566/A280≥5.0 A566/A498<1.5 A620/A566<0.01 |
A545/A280≥5.5 A565/A496<2.7 A620/A545<0.01 |
1.特 點 :
1.從藍藻中純化
2.具有極高的發射量子產率
3.熒光團與蛋白質主鏈共價結合,不被淬滅
4.高水溶性
APC 和 C-PC 的區別:


APC 和 C-PC 的對比:
|
|
APC |
C-PC |
|
分子量 |
104,000 |
264,000 |
|
最大吸收 |
651nm |
651nm |
|
最大發射 |
662nm |
647 nm |
|
消光系數(?) |
7.3x105 M-1cm-1 |
1.53x106cm-1M-1 |
|
熒光量子產率(QY) |
0.68 |
0.81 |
|
吸收比 |
A650/A620≥1.25 A650/A280≥4.5 |
A652/A620<0.3 A620/A280>4 |
交 聯 APC 和 APC 的 對 比 :
1.APC 結構: 它具有α和β亞基,具有明顯的(αβ)3 四級結構。
2.為什么要將APC 進 行 交 聯 ? 答 :交聯是為了防止APC 在稀釋或暴露于變性鹽(如尿素或鹽酸胍) 時
發生可逆解離,從而保持其結構和功能穩定。
3. 如何進行 APC 交聯?
答:通過α和β亞基間的特異性交聯可以阻止APC 的分解。

交聯比:>1.0
|
|
NaClO4 |
A650:A620 |
|
CL-APC |
|
1.465849387 |
|
CL-APC+NaClO4 |
+ |
1.386850153/ |
|
|
NaClO4 |
A650:A620 |
|
APC |
|
1.587272727 |
|
APC+NaClO4 |
+ |
0.317901235 |
注:圖中的紅色線條為沒有添加NaClO4, 藍色線條為添加了NaClO4。
如圖及表中信息所示, CL-APC 圖中添加NaClO4 及沒添加NaClO4, 吸收比沒有明顯變化。而在未交聯的APC
中, 添加NaClO4, 得到的吸收比有非常大的變化, 因為APC中加入了NaClO4 導致了它出現了解離。
2.
特 點 :
1.存在于大多數光合作用的甲藻中
2.高水溶性
3.大斯托克斯位移
光 譜 特 性 :
|
|
PerCP |
|
分子量 |
35,000 |
|
最大吸收 |
483nm |
|
最大發射 |
676nm |
|
消光系數(ε) |
4.0x105 M-1cm-1 |
|
熒光量子產率(QY) |
1.0 |
|
亮度(exQY) |
4.9x105M-1cm-1 |
|
吸收比 |
A482/A280>4.0 |

優 點 :
1.高量子產率
2.高水溶性
3.大量結合位點
4.匹配流式細胞儀
5.大斯托克斯位移
6.制備串聯染料的良好供體
優 點 :
1.高量子產率
2.高水溶性
3.大量結合位點
4.匹配流式細胞儀
5.大斯托克斯位移
6.制備串聯染料的良好供體
4.
注1:整個綴合過程可以在一天內完成。但是,綴合前對 PE 的純化可能需要24-48小時。除了下面列 出的材料外,您還需要濃度至少為 2 mg/ml 的抗體溶液。請您在進行PE 抗體綴合實驗之前熟悉如
何使用脫鹽柱以及如何獲取吸光度光譜。
注 2 : SMCC-PE 綴合物非常穩定 (在“交換緩沖液”中,在4C 下至少可以穩定幾個月)。因此, 如果您需要節省一部分時間,可以選擇同時綴合10 毫克或更多的 PE, 并將其用于幾次抗體實驗(在
幾周內)。 SMCC-PE 的長期儲存最好是作為飽和硫酸銨沉淀物。
一 .P E 的 制 備
1.將 PE 純化。綴合前的濃度通常為 5-10 mg/ml 。 注意: PE 在綴合前作為 SAS ( 硫 酸 銨 鈉 ) 沉
淀物最穩定。如果將 PE 以 SAS 沉淀物的形式儲存,則必須在使用前進行大量純化。
2.使用3 .5毫克R-PE 修飾每毫克lgG, 包括在緩沖液交換過程中損失的額外10%。
3. 檢查 PE 的純度和濃度,請測量280、565 和 6 2 0 nm 處的吸光度。 (1 mg/ml 的 PE 在 565nm 處的 OD 為 8 . 2 ) 。 5 6 5 / 6 2 0 比 率 > 5 0 表示已充分去除污染的藻藍蛋白;565/280 比 率 > 5 表示已充分去除所有其他蛋白質。
二 .P E 的 活 化
1.使用前在無水 DMSO 中制備 10 mg/ml 的 SMCC 儲備溶液。
2.每毫克 PE 加 入 1 1 μlSMCC, 并進行渦旋。將反應管用鋁箔包好,室溫下旋轉60 分鐘。
3.將純化的 PE 過凝膠過濾柱來交換緩沖液。
注意:對于失敗或效果較差的結合,增加或減少 SMCC 相對于 PE 的量,可能會有所好轉。
三 . 1gG 還 原
1.在蒸餾水中制備 1 M DTT(15.4 mg/100 μl) 的新鮮溶液。
2.1gG 溶液濃度應為 4 mg/ml 或更高,這樣效果比較好。還原幾乎可以在任何緩沖液中進行; MES 、 磷酸鹽和 TRIS 緩沖液 (pH 范圍為 6 至8)已被驗證可以使用。如果抗體濃度低于 2 mg/ml, 則應濃縮。緩沖液交換柱上的損失應額外增加10%。
3.用 DTT 配制 20 mMlgG 溶液:每毫升 IgG 溶液加入 20μ lDTT 原液并攪拌。室溫下靜置30
分鐘,無需額外攪拌 (以盡量減少半胱氨酸再氧化為胱氨酸)。
4.將還原的lgG 通過預平衡的“交換緩沖液”過濾柱。收集0.25毫升的級分,測定蛋白濃度,并將含
有大部分lgG 的級分匯集在一起??梢酝ㄟ^分光光度法或比色法完成。
5.此步驟后盡快進行綴合。
注意:對于結合較差或失敗的情況,降低 DTT 濃度可能會有所幫助。
四 .進 行 綴 合
1.每毫克 IgG 添 加 3.2 毫克 SMCC-PE。 用鋁箔包裹反應管并在室溫下旋轉60 分鐘。注意:這些
摩 爾 比 ( 每 IgG 約 2 個 PE) 效果很好。對于失敗或效果不佳的結合,不同的摩爾比可能會有所幫 助。
2.60 分鐘后,必須去掉 lgG 上未反應的游離巰基。
3.在 1.0 ml 干 DMSO 中制備 10 mg NEM 的新鮮溶液。
4.每 毫 克 |gG 添加 34μ g(3.4μl) 。 室溫下包裹并旋轉20 分鐘。
1.
2.60 分鐘后,必須去掉 lgG 上未反應的游離巰基。
3.在 1.0 ml 干 DMSO 中制備 10 mg NEM 的新鮮溶液。
4.每毫克 |gG 添加 34μ g(3.4μl) 。 室溫下包裹并旋轉20 分鐘。
2.
注1:整個綴合過程可以在 一天內完成。但是,綴合前對APC 的純化可能需要24-48小時。除了下面
列出的材料外,您還需要濃度至少為 2 mg/ml 的抗體溶液。請您在進行APC 抗體綴合實驗之前熟悉
如何使用脫鹽柱以及如何獲取吸光度光譜。
注 2 : SMCC-APC 綴合物非常穩定(在“交換緩沖液”中,在4C 下至少可以穩定幾個月)。因此, 如果您需要節省一部分時間,可以選擇同時綴合10 毫克或更多的 APC, 并將其用于幾次抗體實驗(
在幾周內)。 SMCC-APC 的長期儲存最好是作為飽和硫酸銨沉淀物。
一 .A PC 的 制 備
1.將 APC 純化。綴合前的濃度通常為 5-10 mg/ml 。 注意: APC 在綴合前作為 SAS (硫酸銨鈉)
沉淀物最穩定。如果將 APC 以 SAS 沉淀物的形式儲存,則必須在使用前進行大量純化。在用每毫 升 1 升的“透析緩沖液”透析之前,用每毫升1 升 APC 的 PBS 進行透析2 次。
2.使用1 .7毫克APC 修飾每毫克lgG, 包括在緩沖液交換過程中損失的額外10%。
3.檢查 APC 的純度和濃度,請測量280、620和655 nm 處的吸光度。 (1 mg/ml 的 APC 在 655nm 處的 OD 為 5 . 9 ) 。 655/620 比 率 > 1 . 4 表明雜質被充分去除; 655/280 比 率 > 4 表 明所有其他蛋白質均已充分去除
二 .A PC 的 活 化
1.使用前在無水 DMSO 中制備 10 mg/ml 的 SMCC 儲備溶液。
2.每毫克 APC 加 入 6 μlSMCC, 并進行渦旋。將反應管用鋁箔包好,室溫下旋轉60 分鐘。
3.將純化的 APC 過凝膠過濾柱來交換緩沖液。
注意:對于失敗或效果較差的結合,增加或減少 SMCC 相對于 APC 的量,可能會有所好轉。
三 . 1gG 還 原
1.在蒸餾水中制備 1 M DTT(15.4 mg/100 μl) 的新鮮溶液。
2.1gG 溶液濃度應為 4 mg/ml 或更高,這樣效果比較好。還原幾乎可以在任何緩沖液中進行; MES 、 磷酸鹽和 TRIS 緩沖液 (pH 范圍為 6 至8)已被驗證可以使用。如果抗體濃度低于 2 mg/ml, 則應濃縮。緩沖液交換柱上的損失應額外增加10%。
3.用 DTT 配制 20 mMlgG 溶液:每毫升 IgG 溶液加入 20μ lDTT 原液并攪拌。室溫下靜置30
分鐘,無需額外攪拌 (以盡量減少半胱氨酸再氧化為胱氨酸)。
4.將還原的lgG 通過預平衡的“交換緩沖液”過濾柱。收集0.25毫升的級分,測定蛋白濃度,并將含
有大部分lgG 的級分匯集在一起??梢酝ㄟ^分光光度法或比色法完成。
5.此步驟后盡快進行綴合。
注意:對于結合較差或失敗的情況,降低 DTT 濃度可能會有所幫助。
四 .進 行 綴 合
1.每毫克IgG 添加 1 . 5毫克 SMCC-APC 。 用鋁箔包裹反應管并在室溫下旋轉60 分鐘。注意:這 些 摩 爾 比 ( 每 1gG 約 2 個 APC) 效果很好。對于失敗或效果不佳的結合,不同的摩爾比可能會有所 幫助。
2.60 分鐘后,必須去掉 lgG 上未反應的游離巰基。
3.在 1.0 ml 干 DMSO 中制備 10 mg NEM 的新鮮溶液。
4.每 毫 克 |gG 添加 34μ g(3.4μl) 。 室溫下包裹并旋轉20 分鐘。
2.60 分鐘后,必須去掉 lgG 上未反應的游離巰基。
3.在 1.0 ml 干 DMSO 中制備 10 mg NEM 的新鮮溶液。
4.每毫克 |gG 添加 34μ g(3.4μl) 。 室溫下包裹并旋轉20 分鐘。
