藻膽蛋白的自我介紹之藻紅蛋白篇-自主發布-資訊-生物在線

藻膽蛋白的自我介紹之藻紅蛋白篇

作者:西安百螢生物科技有限公司 2024-06-26T00:00 (訪問量:52252)

注: PE  APC 的完整操作步驟及標記方案在最后兩頁,如果不需要看介紹,可直接跳過

 

    (R-PE  B-PE)

  

1.從紅藻中純化

2.具有極高的發射量子產率

3.熒光團與蛋白質主鏈共價結合,不被淬滅

4.高水溶性

 

 R-PE     B-PE       

                              Wavelength (nm)                             Wavelerngn (mm)

R-PE    B-PE       

 

 

 

R-PE

B-PE

分子量

240,000

240,000

最大吸收

565 nm

545 nm

額外的吸收峰

498 nm

564nm

最大發射

573 nm

573 nm

消光系數(ε)

1.96x106 M-1cm-1

2.41x106 M-1cm-1

熒光量子產率(QY)

0.84

0.98

 

 

吸收比

 

A566/A280≥5.0

A566/A498<1.5

A620/A566<0.01

 

A545/A280≥5.5

A565/A496<2.7

A620/A545<0.01

 

1.  

1.從藍藻中純化

2.具有極高的發射量子產率

3.熒光團與蛋白質主鏈共價結合,不被淬滅

4.高水溶性

APC  C-PC  的區別:

APC  C-PC 的對比:

 

 

APC

C-PC

分子量

104,000

264,000

最大吸收

651nm

651nm

最大發射

662nm

647 nm

消光系數(?)

7.3x105 M-1cm-1

1.53x106cm-1M-1

熒光量子產率(QY)

0.68

0.81

吸收比

A650/A620≥1.25

A650/A280≥4.5

A652/A620<0.3

A620/A280>4

 

  APC     APC        

1.APC    結構: 它具有α和β亞基,具有明顯的(αβ)3 四級結構。

2.為什么要將APC     ?  :交聯是為了防止APC 在稀釋或暴露于變性鹽(如尿素或鹽酸胍) 

發生可逆解離,從而保持其結構和功能穩定。

3. 如何進行 APC 交聯?

答:通過α和β亞基間的特異性交聯可以阻止APC 的分解。

交聯比:>1.0

 

 

NaClO4

A650:A620

CL-APC

 

1.465849387

CL-APC+NaClO4

+

1.386850153/

 

 

NaClO4

A650:A620

APC

 

1.587272727

APC+NaClO4

+

0.317901235

注:圖中的紅色線條為沒有添加NaClO4,   藍色線條為添加了NaClO4。

圖及表中信息所示, CL-APC  圖中添加NaClO4  及沒添加NaClO4,   吸收比沒有明顯變化。而在未交聯的APC

中, 添加NaClO4,    得到的吸收比有非常大的變化, 因為APC加入了NaClO4  導致了它出現了解離。

2.

  

1.存在于大多數光合作用的甲藻中

2.高水溶性

3.大斯托克斯位移

 

    

 

 

PerCP

分子量

35,000

最大吸收

483nm

最大發射

676nm

消光系數(ε)

4.0x105 M-1cm-1

熒光量子產率(QY)

1.0

亮度(exQY)

4.9x105M-1cm-1

吸收比

A482/A280>4.0

 

 

 

  

1.高量子產率

2.高水溶性

3.大量結合位點

4.匹配流式細胞儀

5.大斯托克斯位移

6.制備串聯染料的良好供體

 

 

  

1.高量子產率

2.高水溶性

3.大量結合位點

4.匹配流式細胞儀

5.大斯托克斯位移

6.制備串聯染料的良好供體

 

4.

注1:整個綴合過程可以在一天內完成。但是,綴合前對 PE 的純化可能需要24-48小時。除了下面列 出的材料外,您還需要濃度至少為 2 mg/ml   的抗體溶液。請您在進行PE 抗體綴合實驗之前熟悉如

何使用脫鹽柱以及如何獲取吸光度光譜。

 2 : SMCC-PE   綴合物非常穩定 (在“交換緩沖液”中,在4C 下至少可以穩定幾個月)。因此, 如果您需要節省一部分時間,可以選擇同時綴合10 毫克或更多的 PE,  并將其用于幾次抗體實驗(在

幾周內)。 SMCC-PE    的長期儲存最好是作為飽和硫酸銨沉淀物。

 

  .P E   

1.將 PE 純化。綴合前的濃度通常為 5-10  mg/ml  。 注意: PE  在綴合前作為 SAS  (     ) 

淀物最穩定。如果將 PE   SAS   沉淀物的形式儲存,則必須在使用前進行大量純化。

2.使用3 .5毫克R-PE 修飾每毫克lgG,    包括在緩沖液交換過程中損失的額外10%。

3. 檢查 PE  的純度和濃度,請測量280、565 和 6 2 0 nm   處的吸光度。  (1  mg/ml       PE   565nm   處的 OD   8 . 2 ) 。 5 6 5 / 6 2 0 比 率 > 5 0 表示已充分去除污染的藻藍蛋白;565/280 比 率 > 5 表示已充分去除所有其他蛋白質。

 

 .P E   

1.使用前在無水 DMSO   中制備 10  mg/ml      SMCC  儲備溶液。

2.每毫克 PE   1 1 μlSMCC,    并進行渦旋。將反應管用鋁箔包好,室溫下旋轉60 分鐘。

3.將純化的 PE  過凝膠過濾柱來交換緩沖液。

注意:對于失敗或效果較差的結合,增加或減少 SMCC   相對于 PE   的量,可能會有所好轉。

 

 . 1gG     

1.在蒸餾水中制備 1 M  DTT(15.4       mg/100       μl)  的新鮮溶液。

2.1gG  溶液濃度應為 4 mg/ml   或更高,這樣效果比較好。還原幾乎可以在任何緩沖液中進行; MES 、 磷酸鹽和 TRIS    緩沖液 (pH     范圍為 6 至8)已被驗證可以使用。如果抗體濃度低于 2  mg/ml,   則應濃縮。緩沖液交換柱上的損失應額外增加10%。

3. DTT  配制 20 mMlgG    溶液:每毫升 IgG   溶液加入 20μ lDTT      原液并攪拌。室溫下靜置30

分鐘,無需額外攪拌 (以盡量減少半胱氨酸再氧化為胱氨酸)。

4.將還原的lgG 通過預平衡的“交換緩沖液”過濾柱。收集0.25毫升的級分,測定蛋白濃度,并將含

有大部分lgG 的級分匯集在一起??梢酝ㄟ^分光光度法或比色法完成。

5.此步驟后盡快進行綴合。

注意:對于結合較差或失敗的情況,降低 DTT   濃度可能會有所幫助。

 

 .進   

1.每毫克 IgG   3.2 毫克 SMCC-PE。    用鋁箔包裹反應管并在室溫下旋轉60 分鐘。注意:這些

  比 ( IgG    2 個 PE)   效果很好。對于失敗或效果不佳的結合,不同的摩爾比可能會有所幫 助。

2.60 分鐘后,必須去掉 lgG   上未反應的游離巰基。

3.在 1.0 ml  DMSO   中制備 10 mg  NEM  的新鮮溶液。

4.每  克 |gG  添加 34μ g(3.4μl)        室溫下包裹并旋轉20 分鐘。

 

1.

2.60 分鐘后,必須去掉 lgG   上未反應的游離巰基。

3.在 1.0 ml   DMSO  中制備 10  mg  NEM  的新鮮溶液。

4.每毫克 |gG 添加 34μ g(3.4μl)      。 室溫下包裹并旋轉20 分鐘。

 

2.

 

注1:整個綴合過程可以在 一天內完成。但是,綴合前對APC 的純化可能需要24-48小時。除了下面

列出的材料外,您還需要濃度至少為 2 mg/ml   抗體溶液。請您在進行APC 抗體綴合實驗之前熟悉

如何使用脫鹽柱以及如何獲取吸光度光譜。

 2 : SMCC-APC    綴合物非常穩定(在“交換緩沖液”中,在4C 下至少可以穩定幾個月)。因此,  如果您需要節省一部分時間,可以選擇同時綴合10 毫克或更多的 APC,  并將其用于幾次抗體實驗(

在幾周內)。 SMCC-APC     的長期儲存最好是作為飽和硫酸銨沉淀物。

 

  .A  PC   

1.將 APC  純化。綴合前的濃度通常為 5-10  mg/ml   注意 APC  在綴合前作為 SAS  (硫酸銨鈉)

沉淀物最穩定。如果將 APC   SAS   沉淀物的形式儲存,則必須在使用前進行大量純化。在用每毫  1 升的“透析緩沖液”透析之前,用每毫升1 APC   PBS   進行透析2 次。

2.使用1 .7毫克APC 修飾每毫克lgG,    包括在緩沖液交換過程中損失的額外10%。

3.檢查 APC  的純度和濃度,請測量280、620和655 nm   處的吸光度。   (1 mg/ml     APC   655nm   處的 OD   5 . 9 ) 。 655/620   比  > 1 . 4 表明雜質被充分去除;  655/280    比 率 > 4 表 明所有其他蛋白質均已充分去除

  .A   PC   

1.使用前在無水 DMSO   中制備 10  mg/ml      SMCC  儲備溶液。

2.每毫克 APC    6 μlSMCC,    并進行渦旋。將反應管用鋁箔包好,室溫下旋轉60 分鐘。

3.將純化的 APC  過凝膠過濾柱來交換緩沖液。

注意:對于失敗或效果較差的結合,增加或減少 SMCC   相對于 APC   量,可能會有所好轉。

 

 . 1gG     

1.在蒸餾水中制備 1 M  DTT(15.4       mg/100       μl)  的新鮮溶液。

2.1gG  溶液濃度應為 4 mg/ml   或更高,這樣效果比較好。還原幾乎可以在任何緩沖液中進行; MES 、 磷酸鹽和 TRIS    緩沖液 (pH     范圍為 6 至8)已被驗證可以使用。如果抗體濃度低于 2  mg/ml,   則應濃縮。緩沖液交換柱上的損失應額外增加10%。

3. DTT  配制 20 mMlgG    溶液:每毫升 IgG   溶液加入 20μ lDTT      原液并攪拌。室溫下靜置30

分鐘,無需額外攪拌 (以盡量減少半胱氨酸再氧化為胱氨酸)。

4.將還原的lgG 通過預平衡的“交換緩沖液”過濾柱。收集0.25毫升的級分,測定蛋白濃度,并將含

有大部分lgG 的級分匯集在一起??梢酝ㄟ^分光光度法或比色法完成。

5.此步驟后盡快進行綴合。

注意:對于結合較差或失敗的情況,降低 DTT  濃度可能會有所幫助。

 

 .進   

1.每毫克IgG     添加 1 . 5毫克 SMCC-APC 。 用鋁箔包裹反應管并在室溫下旋轉60 分鐘。注意:這    比 (  1gG  約 2 個 APC)  效果很好。對于失敗或效果不佳的結合,不同的摩爾比可能會有所 幫助。

2.60 分鐘后,必須去掉 lgG 上未反應的游離巰基。

3.在 1.0 ml  DMSO   中制備 10 mg  NEM  的新鮮溶液。

4.每  克 |gG  添加 34μ g(3.4μl)        室溫下包裹并旋轉20 分鐘。

 2.60 分鐘后,必須去掉 lgG   上未反應的游離巰基。

3.在 1.0 ml   DMSO  中制備 10  mg  NEM  的新鮮溶液。

4.每毫克 |gG 添加 34μ g(3.4μl)      。 室溫下包裹并旋轉20 分鐘。

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