Cre-LoxP重組酶系統載體構建
產品名稱: Cre-LoxP重組酶系統載體構建
英文名稱: Cre-LoxP重組酶系統載體構建
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Cre-LoxP重組酶系統載體構建服務
Cre-LoxP系統
Cre-Loxp系統策略是進行基因組定點突變的新途徑,可在DNA的特定位點上執行敲除、插入、激活、倒轉及易位等。該系統在80年代被引入后,已被成功的應用于酵母菌、植物、哺乳動物細胞培養及小鼠身上。Cre-LoxP系統包括Cre重組酶和Loxp位點兩個部分。
Cre重組酶是整合酶家族的一員,1981年從大腸桿菌噬菌體P1中發現,是最常用的位點特異性DNA重組酶。Cre基因有1029個堿基,Cre重組酶由343個氨基酸組成(約38kD),它不僅具有催化活性,而且跟限制酶相似,識別特異的DN A序列,如:loxP位點,引起重組。Cre重組酶有70%?的重組效率,不借助任何輔助因子,可作用于多種結構的DNA底物,如線形、環狀甚至超螺旋DNA。
loxP位點是Cre重組酶作用的特異性重組位點,由兩個13 bp的反向重復序列和8 bp的間隔序列構成,長34 bp,具體序列如下:5’一ATAACTTCGTATA一GCATACAT一TATACGAAGTTAT一3’?/ 3’一TATTGAAGCATAT 一CGTATGTA一ATATGCTTCAATA一5’。 兩個反向重復序列是Cre的識別序列,中間的間隔序列是重組發生的位置,同時也決定了loxP位點的方向,根據loxP序列的排列方向產生不同的重組結果。
圖1. Cre重組酶結合loxP的位點
Cre-loxP系統的原理
Cre-loxP系統存在以下幾種誘導重組的方式,這是基于Cre重組酶與loxP位點的相互作用而實現的。當基因內存在loxP位點且有Cre重組酶存在時,Cre重組酶便會與loxP位點兩端的反向重復序列區結合形成二聚體。此二聚體與其他loxP位點的二聚體結合,進而形成四聚體。隨之,loxP位點之間的DNA序列被Cre重組酶切掉,切口通過DNA連接酶重新連接。DNA重組結果主要取決于loxP位點的方向及位置
Cre重組酶介導的兩個loxP序列間的特異性重組根據序列位置和方向的不同分為三種 情況:①當兩個loxP序列位于同一條DNA鏈且方向相同時Cre重組酶能夠敲除兩個loxP序列間的DNA片段;②當兩個loxP序列位于同一條DNA鏈且方向相反時,Cre重組酶能夠反轉兩個loxP序列間的DNA片段;③當兩個loxP序列位于不同DNA鏈上時,Cre重組酶能夠介導loxP序列間DNA鏈的交換或染色體易位。Cre重組酶介導兩個LoxP位點間的重組是一個動態、可逆的過程。
圖2. Cre-loxP系統誘導重組的方式
Cre-loxP系統的優點
- 高效性;
- 時空特異性;
- 應用范圍廣。
Cre-loxP系統的應用
- 條件性基因敲除小鼠的構建
- 轉基因動物依賴的基因敲除
- 利用原核注射的方法獲得轉基因“Cre小鼠”。在Cre基因上游加入特異性啟動子,利用啟動子控制Cre重組酶的表達;
- 在胚胎干細胞(ES)中通過置換型載體進行同源重組,向基因組靶位點引入選擇標記基因,并在其兩側引入兩個同向排列的Loxp位點。兩條同源染色體都帶有 Loxp位點且引入的Loxp位點不能干擾靶基因的轉錄。將該ES細胞打入假孕母鼠中,發育成“floxed小鼠”;
- “Cre小鼠”和“floxed小鼠”交配,Cre重組酶會在特定組織細胞表達,并切掉Loxp位點之間的靶基因和1個Loxp位點,從而達到靶基因的失活或敲除。
?????????(2)區域特異性不高。

圖3. 使用cre-loxp系統獲得組織/細胞特異性基因敲除小鼠(Kesha Rana,?et al., Asian J Androl, 2014)
- 病毒依賴的基因敲除
- 通過轉基因動物辦法獲得“Cre小鼠”或“floxed小鼠”;
- 注射Cre病毒進loxP轉基因小鼠體內,或者注射loxP病毒到Cre轉基因小鼠體內,引入Cre或loxP元件。
? ? ? ? ? ? ? ? ? (2)區域特異性高。
二、基因插入
????采用同源重組技術,在基因組上人工構建兩個Loxp 位點,借助構建的兩個Loxp 位點,把兩端帶有Loxp 位點的外源基因重組到基因組上,此種重組是雙向的,既可以把外源基因重組到小鼠基因組內,也可把小鼠基因組內源基因重組出來,這是定點整合的重要手段之一。
三、基因激活
利用Cre/Loxp系統不僅可對基因進行敲除,還可對基因進行特定激活,了解基因的正向效應。在兩個同向Loxp位點之間加入終止信號,Loxp位點后加入靶基因,與Cre小鼠交配后,靶基因激活。
四、基因倒轉、易位等
Cre-loxP系統的新進展
- 對Cre元件的改造:在Cre元件的C端接上雌激素受體(ER)的配體結合結構域,為了避免體內雌激素的干擾,可對雌激素受體的配體結合區做一定程度的改變,使其只能和某些雌激素衍生物相結合。目前使用最多的是Cre-ERT2突變體,融合蛋白Cre-ERT2不能入核,定位在胞漿內,當雌激素衍生物tamoxifen結合到Cre-ERT2受體結合結構域后,蛋白才會通過構象變化從錨定蛋白HSP90上解離下來,進入細胞核,識別loxP位點并發生重組。通過控制tamoxifen的注射時間,就可以調控基因重組的時間特異性。

圖4. 他莫昔芬誘導的Cre-ER系統(Hyeonhui Kim, et al., Lab Anim Res. 2018)
- 對loxP元件的改造:loxP元件也可以在間隔區和回文序列進行突變,不同的堿基選擇就造就了不同的lox位點,常見的有 lox2272、lox511、lox5171、loxN和loxP等。突變后的loxP序列和同樣突變的loxP序列匹配,才能被Cre重組酶識別和重組,而不能和未突變的loxP序列匹配,這樣就可以將不同的loxP序列組合用于控制多個基因,在Cre重組酶的作用下,實現多個基因的重組。Brainbow技術就是根據loxP序列的改造而實現的。
- 四環素誘導型tetO-Cre:將四環素調控系統與Cre-loxP系統相結合,需要用兩種轉基因小鼠交配使用。一種是由四環素響應啟動子元件(TRE, 也叫?tetO)控制的Cre工具鼠(TRE-Cre, 也叫tetO-Cre);另一種是由組織特異性啟動子驅動的表達四環素轉錄活化因子?tTA?或?rtTA的小鼠。tTA或rtTA與tetO的結合受四環素或其衍生物強力霉素(Dox)的調節。tTA在沒有Dox的時候與tetO結合誘導Cre表達,有Dox的時候不能與tetO結合,Cre不表達;rtTA與tTA相反,有Dox的時候與tetO結合,誘導Cre表達,沒有Dox的時候與tetO不結合,Cre不表達。因此可以通過Dox來調控Cre在特定時間及特定組織細胞中的表達,從而介導基因重組。

圖5. 四環素誘導型tetO-Cre(Hyeonhui Kim, et al., Lab Anim Res. 2018)
樞密科技可提供Cre-loxP重組<
