AB-PAS染色試劑盒
產品簡介:
糖原染色是病理學中常規的染色方法之一，McManus 在1946 年最先使用高碘酸-雪夫技術顯示黏蛋白，該
法常用來顯示糖原和其他多糖，該染色液不僅能夠顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質和某些酸性物質。
阿利新藍和PAS 技術聯合使用可鑒別同一組織切片中的中性黏蛋白和酸性黏蛋白。這種技術也常用作廣泛
檢測黏蛋白的手段。該技術染色陰性，可明確斷定該物質不是黏蛋白。在大多數方法中，切片先經標準的阿利
新藍（pH 值為2.5）染色，在使用PAS 技術。阿利新藍可將唾液黏蛋白、硫黏蛋白和蛋白多糖染成藍色。PAS
技術可將中性黏蛋白染成深紅/紅紫色，同時將既含中性黏蛋白有含酸性黏蛋白的組織和細胞染成深淺不同的紫
色，這是有于阿利新藍與Schiff 試劑結合并反應。上述染色?？沙霈F在含有中性黏蛋白和唾液黏蛋白的小腸杯
狀細胞中。
阿利新藍是類銅鈦花青染料，這種陽離子染料與酸性基團結合，也即阿利新藍與組織內含有的陰離子基團
如羧基和硫酸根形成不溶性復合物。分子中帶正電荷的鹽鍵與酸性黏蛋白多糖物質中帶負電荷的酸性基團結合
形成不溶性的復合物而呈藍色，再于PAS 進行復合染色，就能顯示三種不同黏液物質成分。
產品組成：
名稱 編號 6x50ml 6x100ml Storage
試劑（A）阿利新藍染色液 50ml 100ml 4℃ 避光
試劑（B）過碘酸溶液 50ml 100ml 4℃ 避光
試劑（C）Schiff Reagent 50ml 100ml 4℃ 避光
試劑（D）蘇木素染色液 50ml 100ml 4℃ 避光
試劑（E）酸性分化液 50ml 100ml RT
試劑（F）Scott 藍化液 50ml 100ml RT
?備材料：
1、 蒸餾水
2、系列乙醇
操作步驟（僅供參考）
1、 脫蠟至水，蒸餾水水洗2min。
2、 阿利新藍染色液染色10-20min。
3、 蒸餾水洗3 次，每次1-2min。
4、 放入過碘酸溶液中進行氧化5min。
5、 Schiff Reagent 浸染10-20min
6、 傾去Schiff Reagent，流水沖洗10min
7、 （可選）蘇木素染色液染核1-2min
8、 用酸性分化液分化2-5s，水洗。
9、用Scott 藍化液返藍，水洗3min
10、逐級常規乙醇脫水，二甲苯透明，中性樹膠封固
染?結果：
糖原、中性黏蛋白、各種糖蛋白——紫紅色
酸性黏蛋白（硫黏蛋白和唾液黏蛋白）——藍色
蛋白多糖和透明質酸——藍色
備注：含有中性黏蛋白和酸性黏蛋白的細胞或組織可染成不同程度的藍紫色至紫色。
注意事項：
1、切片脫蠟應盡量干凈，否則影響染色效果。
2、過碘酸氧化時間不宜過久，氧化時的溫度以18-22℃最佳。
3、試劑（A）、試劑（B）、試劑（C）應置于4℃密閉保存，使用時避免接觸過多的陽光和空氣。使用前，最好
提前30min 取出恢復到室溫后，避光暗處使用。
4、酸性分化液應經常更換新液，其分化時間應該依據切片厚薄、組織的類別和酸性分化液的新舊而定，另外分
化后自來水沖洗時間應該足夠。
5、切片在過碘酸和Schiff Reagent 中作用時間非常重要，該依據切片厚薄、組織的類別等決定。
6、如用蘇木素染色液復染細胞核時一定要淡染，以免影響陽性物質觀察，目的是防止胞漿或黏蛋白著色而掩蓋
阿利新藍的顏色。
7、研究表明，阿利新藍-PAS 聯合技術的染色順序可影響最終結果。PAS 技術在阿利新藍染色之前時，中性黏
蛋白和糖原可染成紫色。與此相反，阿爾辛藍染色在PAS 技術之前時，則可將這些物質染成預期的紫紅色。
8、為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。
有效期：6個月有效。