適用于從含有雜質的DNA溶液中回收100bp-10kb的DNA。

·10-15分鐘（三個步驟）內即可完成DNA的清潔回收。

·最高可以達到95%的回收效率。

·核酸純化柱無須平衡液處理，可最大吸附10 μg DNA。

·溶液中所含的pH指示劑可直觀地判斷溶液中DNA與硅膠膜的最適宜結合條件。

·起始樣品：酶反應體系或者含有雜質（比如鹽份和酚/氯仿殘留、糖原或多糖殘留、蛋白質殘留等）的DNA?? 溶液。

·所需儀器：可適合2ml離心管使用的離心機。????????????????????????????????????????????????????????????????

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右圖:
30 μl 100 bp DNA Marker經Simgen PCR清潔試劑盒清潔后，用30μl Buffer TE洗脫（A，B，C），與未清潔的DNAMarker（50%，100%）對照各個片段的回收效率。
1.5% TAE?瓊脂糖凝膠

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產品原理：
硅膠膜可在高鹽條件下結合DNA，又可在低鹽條件下與DNA分離。用于清潔目的的含DNA溶液中的引物、單核苷酸、酶、礦物油、鹽離子等雜質因為沒有與DNA相似的特性，所以被分離除去。結合在純化柱上的DNA經洗滌液洗滌后，即可回收到高純度的DNA。

操作步驟
在需要清潔的DNA溶液中加入結合緩沖液，混勻后加入到核酸純化柱中，經過離心步驟使DNA結合到純化柱上，其他雜質則被過濾出去。經清洗液洗滌一次純化柱上的DNA后，DNA即可被TE溶液洗脫下來。

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• DNA測序
• 基因芯片分析
• DNA連接與轉化
• 限制性酶切
• 標記
• 微注射
• PCR?
• 體外轉錄

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常見問題分析

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1.?????回收不到DNA或者DNA的回收效率低

可能的原因：

1）????? Buffer WG或Buffer WB中未加入無水乙醇，應按比例補加無水乙醇。如果是錯誤地加入了其他試劑，請向我公司技術部尋求幫助。

2）????? Buffer WG或Buffer WB中錯誤地加入了70%乙醇。請向我公司技術部尋求幫助。

3）????? DNA的洗脫效率差。參考第3頁柱純化技術中的第4點“洗脫DNA”內容優化DNA的洗脫方案。

4）將溶液加入到純化柱前應觀察BufferG或Buffer P是否保持著原來的橙黃色，如果溶液變為紫紅色，必須加入約10 μl 3 M醋酸鈉（pH 5.0）使溶液恢復至原來的橙黃色，否則將嚴重影響DNA結合到純化柱上。

僅凝膠回收：

5）制作的凝膠從加樣孔至DNA泳動方向呈現為一個降低的斜面，DNA在泳動的過程中大量地流失到電泳緩沖液中。制作瓊脂糖凝膠時應注意放平制膠槽，并加入足夠量的凝膠液。

6）凝膠沒有完全被溶解，DNA仍保留在未溶解的凝膠中。在50°C溶膠時每隔2-3分鐘請將離心管漩渦振蕩數秒以幫助凝膠徹底溶解。

7）在凝膠溶解后的溶液中加入異丙醇出現霧狀沉淀。出現該種現象主要是因為凝膠沒有被徹底溶解，此時應注意不要省略后續的Bufffer G的洗滌步驟，并且加入BufferG到純化柱中后室溫靜置1分鐘，以增強對未溶解的凝膠的洗滌效果。

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2.????回收的DNA生物學活性差

1）??回收的DNA中鹽分殘留量過高。向純化柱中加入BuffferWG或者Bufffer WB后，室溫靜置5分鐘后再離心，可最大程度地洗去純化柱上殘留的鹽分。

2）??回收的DNA中乙醇殘留量過高。注意不可省略高速空離（14000 rpm?離心1分鐘）步驟。