抗體的純化方法很多,最為常用的為以下四種方法，基于工業化生產工藝開發的規模化生產方法要比這些復雜得多，甚至多個純化策略聯合使用，有興趣的科研工作者可以查閱相關的文獻。

1)沉淀法：利用抗體蛋白疏水性不同，提高鹽離子濃度蛋白沉淀，常用的沉淀方法有硫酸銨沉淀法、辛酸沉淀法、辛酸-硫酸銨沉淀法、優球蛋白沉淀法和聚乙二醇沉淀法；這類純化各有各的優缺點，往往對某些亞型抗體有偏愛性。

2)廣譜親和純化：這類純化主要是利用金黃色葡萄球菌ProteinA /G蛋白可以特異性與抗體的Fc結合的原理進行的。

3)抗原特異性純化：將特異性的抗原偶聯到瓊脂糖凝膠等固相載體上，純化方法與ProteinA /G純化方法相同。

4)離子交換法：DEAE-Sephadex A-50（二乙氨基—乙基-葡萄糖凝膠A-50）為弱堿性陽離子交換劑。用NaOH將Cl-型轉變為OH-型后，可吸附酸性蛋白。血清中的γ球蛋白屬于中性蛋白（等電點為pH6.85～7.5），其余均屬酸性蛋白。pH7.2～7.4的環境中，酸性蛋白均被DEAE- Sephadex A-50吸附，只有γ球蛋白不被吸附。因此，通過柱層析，γ球蛋白便可在洗脫中先流出，而其他蛋白則被吸附在柱上，從而便可分離獲得純化的IgG。

1. (NH4)2SO4沉淀法純化抗體

1.1 飽和硫酸銨配制：無菌去離子水加入足量硫酸銨之后，加熱到65℃以上，在磁力攪拌器上攪拌溶解至底部仍有未溶解的硫酸銨，待冷卻后，取上清濾紙過濾。

1.2 樣品（血清或腹水），12,000rpm離心30min（4℃），除去細胞碎片，保留上清液并測量體積。

1.3 邊攪拌邊緩慢加入等體積的飽和硫酸銨溶液到上清液中，溶液放在磁力攪拌器上室溫攪拌6h或攪拌過夜（4℃），使蛋白質充分沉淀。

1.4 蛋白溶液12,000rpm離心30min（4℃），沉淀用原樣品體積的PBS溶液重懸，重懸后12,000rpm離心10min（4℃），上清轉移到一個新離心管。

1.5 邊攪拌邊慢慢加入1/2體積的飽和硫酸銨溶液到上清液中（此時硫酸銨濃度為33%飽和），溶液放在磁力攪拌器上攪拌6h或攪拌過夜（4℃），使蛋白質充分沉淀。

1.6 蛋白溶液12,000rpm離心30min（4℃），沉淀用原樣品體積的PBS溶液重懸，重懸后12,000rpm離心10min（4℃）。

1.7 沉淀溶解后放入透析袋對?PBS?溶液透析?24～48?h（4℃?），每隔?3-6?h換透析緩沖液一次，以徹底除去硫酸銨。

（硫酸銨是否透析干凈的判斷標準：可取透析袋內少許溶液，加入等體積的0.02M BaCl2溶液，如果沒有沉淀表明硫酸根離子除盡。）

硫酸銨沉淀法的優點是適合抗體大規模純化或者濃縮。缺點事某些抗體經硫酸銨沉淀后抗體的活性會有所降低或喪失，抗體純度不高。

2. 辛酸-硫酸銨沉淀純化抗體

辛酸-硫酸銨方法一般用于純化單克隆抗體。

2.1 腹水用雙層濾紙過濾，除去雜質、脂肪及細胞碎片。4℃，12,000r/min，離心15min，收集上清，棄沉淀。精確定量腹水體積。

2.2 腹水中加入2～4倍體積的醋酸鹽緩沖液(0.06M，pH4.8)磁力攪拌混勻，用2MHCL調pH至4.5～ 4.8。

2.3 磁力攪拌下緩慢加入正辛酸，33μL/mL腹水，加完后室溫磁力攪拌半h，后置4℃靜置2h以上。

2.4 4℃,12000r/min，離心5min，收集上清，雙層濾紙過濾，收集濾液。

2.5 量取濾液體積，加入1/10體積的0.1M PBS (pH7.4),用2M NaOH（記錄NaOH體積）調pH至7.4。

2.6 將上清冰浴預冷，加硫酸銨固體至0.277g/mL，邊加邊攪拌，并于30min內加完，置4℃過夜。

2.7 12000r/min，離心15min，棄上清;用1/10腹水體積0.01M PBS溶解沉淀; 對0.01M PBS(pH 7.4)透析一天，離心去掉不溶雜質，用純水進行透析，優球蛋白析出后離心收集澄清抗體溶液分裝置于-20℃凍存。

?（辛酸-硫酸銨沉淀主要缺點是只適合于提純IgG1和IgG2b,不能用于IgM和IgA的純化;其優點是操作簡單方便,抗體回收率和產率均高,抗體活性損失小。）

3.優球蛋白沉淀法　

優球蛋白沉淀法適用于IgG3和IgM型單抗的提取,用該法純化的抗體活性幾乎保持不變,對IgG3單抗的回收率高于90%,對IgM單抗的回收率為40%～ 90%。

4.聚乙二醇(PEG)沉淀法　

PEG沉淀法原理PEG具有強極性,產生極強的親水性,奪取水分子導致抗體分子析出;該方法常用于IgM的純化,PGE沉淀可使IgM達到較高的純度(大于90%)和回收率(大于80%)。