金擔子素A?(Aureobasidin A，AbA)是從絲狀真菌Aureobasidium pullulans?No. R106中分離出來的環酯肽類抗生素，具有很強的抗真菌能力，在較低的濃度下(0.1-0.5 μg/mL)即可對酵母產生毒性。AbA作用機制是通過抑制酵母中AUR1基因編碼的肌醇磷酰胺合成酶(inositol phosphorylceramide synthase, IPC synthase)的活性，阻礙神經酰胺到肌醇磷酰胺的合成，導致鞘脂類物質不足，細胞膜破裂，從而殺死菌株。對AbA敏感的的真菌種類包括：出牙酵母(Saccharomyces cerevisiae)、粟酒裂殖酵母(Schizosaccharomyces pombe)、光滑念珠菌(Candida glabrata)、構巢曲霉(Aspergillus nidulans)和黑曲霉(A. niger.)。

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圖1?AbA結構式，CAS#127785-64-2

研究發現，釀酒酵母的AUR1基因與構巢曲霉的AURA基因具有同源性，都能編碼IPC合成酶，因此，對這兩個基因進行突變，能夠賦予菌株很強的AbA抗性，比如：突變基因AUR1-C。AbA非常適合作為篩選陽性克隆的藥物選擇性標記，使用上也不需要優化條件，且背景極低。AbA抗性也是酵母單/雙雜交研究中理想的報告子，兼容于攜帶相應抗性的酵母雜交系統。

酵母雙雜交系統(Yeast two-hybrid assay)是由Fields和 Song等人根據真核轉錄調控的特點創建的，能夠快速、直接分析已知蛋白之間的相互作用，在研究抗原和抗體相互作用、發現新蛋白質和蛋白質的新功能、篩選藥物作用靶點、建立基因組蛋白連鎖圖等方面應用廣泛。酵母雙雜交原理是：真核生物的轉錄激活因子含有兩個不同的結構域：DNA結合結構域(DNA binding domain，DNA-BD)和DNA轉錄激活結構域(Activation domain，AD)，這兩個結構域可以獨立分開，功能互不影響。BD和AD分別單獨作用并不能激活轉錄反應，只有當二者在空間上充分接近時，才呈現完整的轉錄激活因子活性，使下游基因得到轉錄。將兩待研究蛋白（蛋白X與蛋白Y）分別與BD?、AD結構域構建融合質粒，轉入同一酵母細胞中表達，如果兩蛋白之間不存在相互作用，則報告基因不會轉錄表達；如果兩個蛋白存在相互作用，則BD與AD兩結構域空間上很接近，從而報告基因得到轉錄。

圖2?酵母雙雜交原理圖[1]

酵母單雜交技術是在酵母雙雜基礎上發展而來的一種研究核酸-蛋白相互作用的工具，被廣泛用于研究真核細胞內基因的表達調控，如鑒定已知DNA和已知蛋白質之間是否存在相互作用；分離結合于目的順式調控元件或其他短DNA結合位點的新蛋白質；準確定位已經證實的具有相互作用的DNA結合位點和對蛋白質的DNA結合結構域進行分析。它的基本原理是將已知順式作用元件構建到最基本啟動子(minimal promoter，Pmin)的上游，把報告基因連接到Pmin下游。將編碼待測轉錄因子cDNA與酵母AD結構域融合表達載體導入酵母細胞，該基因產物如果能夠與順式作用元件相結合，就能激活 Pmin啟動子，使報告基因得到表達。

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圖3?酵母單雜交原理圖[2]

針對酵母單/雙雜交研究，翌圣生物推出產品60231ES Aureobasidin A (AbA)金擔子素A，是溶于甲醇的AbA溶液，純度 ≥?97%，濃度為1 mg/mL。翌圣推薦在酵母單/雙雜交實驗中AbA抑制濃度為：100-1000 ng/mL，具體的工作濃度取決于宿主細胞的敏感度（見表1. AbA對各種酵母菌的最低抑菌濃度(MIC)）。

表1?Aureobasidin A對各種酵母菌的最低抑菌濃度

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為研究GmWRKY31蛋白在GmSAGT1基因啟動子上的結合位點，在酵母單雜實驗中，將目的DNA序列插入到含有尿嘧啶報告基因Ura3的pBait-AbAi載體中，位于基因AUR1-C的上游，酵母轉化相應質粒后懸浮在0.9% NaCl溶液中，OD600調整為0.005。隨后，將100?μL樣品涂于含500 ng/mL AbA的平板上，倒置，30℃下培養3-5天。[3]