聯盟澳洲專家S Shabala:HKT1;5通過調節Na+/K+穩態傳遞Ca2+信號促植物耐鹽-自主發布-資訊-生物在線

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聯盟澳洲專家S Shabala:HKT1;5通過調節Na+/K+穩態傳遞Ca2+信號促植物耐鹽

作者:旭月(北京)科技有限公司 2021-05-17T13:57 (訪問量:5605)

x !important; word-wrap: break-word !important;">+流速。請注意,此圖正值表示吸收,負值表示外排。

Na+/H+交換體的運行受SOS途徑的控制,這一過程的關鍵步驟是鹽脅迫引起的胞質游離Ca2+含量增加。胞漿Ca2+的這種變化對于調節NADPH氧化酶的運作也是必不可少的,它通過促發性ROS的產生影響陽離子通道的活性。因此,研究比較了上述水稻HKT1;5株系中NaCl誘導的Ca2+流速變化(圖3)。實時NaCl處理會引起短暫的Ca2+外流,然而,這種反應在EZ中更強烈,在瞬態反應結束后,Ca2+流速值仍然為負,表明有一些主動的Ca2+外排系統參與其中。Ca2+外排順序是NILSKC1,這表明HKT1;5NILSKC1的過度表達損害了其中一個Ca2+外排系統(Ca2+-ATPase或CAX交換器)的運行。



圖3. 不同根區的根表皮細胞在80 mM NaCl實時處理下Ca2+流速。(A)WT植株根伸長區和成熟區的瞬時Ca2+流速。(B, C)NIL(SKC1)、WT和Oshkt1,5植株根的伸長區和成熟根區在脅迫后30 min內的Ca2+流速平均值。請注意,此圖正值表示吸收,負值表示外排。

H2O2在陽離子滲透通道對H2O2的鹽度適應性響應和敏感性中起重要作用。因此,研究比較了H2O2誘導的三種基因型根表皮Ca2+流速的大小(圖4)。與之前的研究結果類似,H2O2誘導了瞬時Ca2+內流,大小為KD>WT>NIL(SKC1)。因此,在NIL(SKC1)中過表達HKT1;5,降低了Ca2+滲透陽離子通道對H2O2的敏感性,可能影響植物感知和響應鹽脅迫的能力。


圖4. 10 mM H2O2處理下水稻根系伸長區Ca2+流速。(A)WT的根伸長區瞬時Ca2+流速。(B)NIL(SKC1)、WT和Oshkt1,5(KD)根表皮細胞Ca2+流速峰值。請注意,此圖正值表示吸收,負值表示外排。

圖5. 水稻根伸長區Ca2+流速檢測圖

其他實驗結果

· NILSKC1)在伸長區和成熟根區HKT1;5的表達量均顯著高于WT,并且HKT1;5的轉錄水平隨著鹽度的升高而顯著上調

· 80 mM NaCl處理1周后,NILSKC1)株系表現出較為敏感的表型,與WT相比,葉片褪綠壞死比例較大,相對地上部和根系干重顯著降低。

· NILSKC1)植物在鹽條件下積累了較多的K+,但也有較多的Na+。后者的結果顯然與SKC1可以去除地上部分Na+的作用不符。

· 研究比較了WTSKC1植物根系中影響植物離子穩態的一些關鍵基因表達水平的變化。多個轉運蛋白基因的表達水平存在顯著差異;這種差異也表現出強烈的時間依賴性和組織依賴性(例如,在伸長區和成熟根區有不同的響應模式)。特別是,NILSKC1)在對照和鹽脅迫下RBOH轉錄本的表達均有所降低(在兩個根區),而RBOHD在伸長區表達量要高得多。此外,與WT相比,在鹽脅迫下,NILSKC1)的GORK表達降低,而RBOHD轉錄本的表達增加。此外,兩個根區的SOS1轉錄水平都較低。

結論

總的來說本研究結果表明,由于生物體內存在多種反饋回路,利用突變體植物獲得的結果應該非常謹慎地對待,不能作為有關特定基因作用的機理證據。此外,轉錄分析和GUS染色可能具有誤導性,提供的關于特定轉運蛋白運作/功能的信息不完全。因此,需要更加重視植物體的功能檢測

測試液

0.2 mM NaCl, 0.1 mM CaCl2, 0.2 mM KCl, pH 5.5

儀器采購信息

· 據中關村NMT產業聯盟了解,佛山科學技術學院于2018年采購了旭月公司的非損傷微測系統。

文章原文https://doi.org/10.3390/ijms21144882

關鍵鹽脅迫;木質部裝載;鈉;鉀;SKC1;HAK5;GORK;RBOHD;表皮;中柱