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克隆技術,又稱為“生物放大技術”,目前應用最廣泛的技術為“分子克隆”,即通過重組技術將目的DNA片段按照人們的設計定向連接起來,在特定的受體細胞中與載體同時復制并得到表達,產生新的遺傳性狀的技術。
大部分的分子克隆方法,諸如傳統分子克隆、TA克隆、Gatway克隆、TOPO克隆、無縫克隆等都繞不開目的片段制備、載體制備、連接、轉化、篩選等等步驟。其中,設計引物、載體和片段,都需要使用相應的分子克隆工具進行操作和模擬,接下來小翌會以同源重組為例,具體解析一下分子克隆技術中應用到的那些工具,為您的實驗提供好方法。
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01
基因組序列查詢工具
進行分子克隆實驗之前,需要根據下游實驗目的,確認實驗中應用到的片段物種并查找序列。假設需要在自己的載體上加入人基因組DNA,可以使用NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)在線查詢,選擇“Nucleotide”,輸入“human”,點擊查詢后,獲得5000多萬條基因序列,如圖1所示。
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點擊序列如智人KIR3DL2蛋白的mRNA序列(KIR3DL2基因),進入界面后會給出該基因的來源物種、詳細名稱、功能描述、文獻出處、核酸序列及氨基酸序列信息等信息。點擊右上角的“Send to”可以獲得該基因的完整序列(純文本格式)。
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02
目的片段和載體引物設計工具
獲得目的片段后,根據同源重組原理,需要在插入片段的上下游引入15-25 bp的同源臂,GC含量40-60%,以保證片段與載體充分接觸并進行重組。可以通過翌圣官網“支持中心”的“同源重組引物設計”點擊進入,或者直接點擊無縫克隆引物設計軟件網址(https://www.yeasen.com/hieff-clone/)進行設計引物。輸入需要的載體序列和目的片段序列,選擇合適的酶切位點(不建議選擇載體和片段中都含有的酶切位點),生成引物,如圖3、4所示。
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值得注意的是,多個目的片段插入的雙酶切位點,實際添加到第一個片段的5’端和最后一個片段的3’端,中間片段不含有設計的酶切位點。通過引物合成公司合成需要的引物序列。接著使用翌圣高保真PCR試劑盒(Cat#10164ES)PCR擴增目的片段與載體。
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03
載體設計模擬軟件
當設計完目的片段后,需要對載體和片段進行模擬連接,保證實驗的準確性??梢允褂肧napgene軟件模擬。以pUC19為載體,KIR3DL2基因為插入片段,進行克隆連接模擬。選擇“Actions”—“Gibson Assembly”—“Insert Fragment”,輸入相應的插入片段和載體序列,如下圖5所示,即可生成連接后的載體。點擊新生成載體的“History”可以模擬載體與片段連接的具體步驟,如圖6所示。


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模擬步驟后,即可使用翌圣新品通用型多片段快速克隆試劑盒(Cat#10923ES)連接目的片段,該試劑盒滿足6 μL小體系、10 ng低濃度載體與片段的連接,菌落數多,克隆陽性率高,客戶反饋效果好,如圖7所示。
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?小體系低濃度載體高效率重組??
實驗信息:載體大?。?369 bp;目的片段大?。?589 bp。
實驗數據:
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除了上述基礎的分子克隆技術應用工具外,還有如紐約大學研究人員開發的gRNA在線設計軟件(https://cas13design.nygenome.org/),用于設計CRISPR-Cas13的gRNA引物等。分子克隆應用工具多種多樣,應用好工具,能為我們的實驗添磚加瓦。小翌在這里祝您實驗順利,一氣呵成!關注我們,小翌會在下一期繼續帶來分子克隆方面的知識,為您的實驗帶來新的思路與方向,期待下一次的見面~
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04
相關產品列表
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產品定位 |
產品名稱 |
產品貨號 |
規格 |
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高保真PCR |
2× Hieff Canace? AdvanceFast PCR Master Mix (With Dye) |
1 mL/5×1 mL |
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1-7片段一步法定向連接,最快5分鐘完成重組反應 |
Hieff Clone? Universal II One Step Cloning Kit |
20 T/50 T |
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通用緩沖液,5min完成精準酶切 |
FuniCut?快速限制性內切酶 |
50 T |
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快速PCR,快至1s/kb |
2×Hieff??Ultra-Rapid HotStart PCR Master Mix(with Dye) |
1 mL/5×1 mL |
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