Oligo DNA的人工化學合成始于50年代初期,1980年,全自動的固相DNA合成儀面市后,使得快速、高效合成Oligo DNA成為可能,這大大地推動了生物工程技術的蓬勃發展。
現在一般都采用β-乙*亞磷酰胺化學合成Oligo DNA,將DNA固定在固相載體上完成DNA鏈的合成的合成時從3' →5' 方向進行,通常3' 端的第一個堿基結合在Glass擔體 (Controlled Pore Glass,CPG)上。其具有高效、快速的偶聯以及起始反應物比較穩定的特點。
合成步驟
Step1:脫掉附加在CPG擔體上的第一個堿基5' -OH基團上的保護基 (DMTr),準備附加下一個新的堿基;
Step2:活化新的堿基單體 (Phosphoramidite),準備與第一個堿基進行反應;
Step3:第二個堿基與第一個堿基發生偶聯反應;
Step4:將沒有反應的第一個堿基的5' -OH加帽封死 (Capping),使其不再進一步參與反應;
Step5:將核苷亞***氧化成更穩定的核苷*** (即將三價磷氧化成五價磷);
Step6:重復進行Step1~Step5的循環,直至合成完所需的Oligo DNA序列;
Step7: ?合成結束后,將Oligo DNA分子從CPG上切下,再進行進一步的純化。
OD數的確定
一般PCR擴增,2 OD引物,可以做200-500次50ul標準PCR反應。如果是做基因拼接或退火后做連接,1 OD就足夠了。但是有些研究人員,就做幾次PCR,但是卻要5-10 OD。做全基因構建的引物都比較長,但是我們有些研究人員也要求高OD數。片段越長, 最后全長得率就越低,出錯的幾率就越大。超出需要之外的OD數要求,也是一種浪費。
引物純度檢測
實驗室方便的作法是用PAGE方法。使用加有7M尿素的16%的聚丙烯酰胺凝膠進行電泳。取0.2-0.5OD的引物,用尿素飽和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到飽和,上樣前加熱變性(95℃,2mins)。加入尿素的目的一是變性,二是增加樣品比重,容易加樣。600V電壓進行電泳,一定時間后(約2-3小時),剝膠,用熒光TLC板在紫外燈下檢測帶型,在主帶之下沒有雜帶,說明純度是好的。如果條件許可,也可以用EB 染色或銀染方式染色。
引物級別選擇
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