題目:The Pseudomonas transcriptional regulator AlgR controls LipA expression via the noncoding RNA RsmZ in Pseudomonas protegens Pf-5
期刊:Biochemical and Biophysical Research Communications
影響因子:2.466
主要技術:EMSA
研究背景
脂肪酶(Lipase)是一種存在于動物、植物、微生物中的工業用酶,廣泛應用于食品、去垢劑、生物質能等領域。目前商品化的脂肪酶主要來源于微生物,但傳統的育種、培養基營養優化的手段在提高其產量方面面臨瓶頸,亟待從分子機制層面尋找解決途徑。目前研究證實細菌中脂肪酶的表達受到雙組份調控體系如LipQ-LipR的調節,但假單胞菌P. protegens Pf-5菌株的分子調控機制有待深入研究, AlgR作為轉錄調控因子在假單胞菌P. protegens Pf-5菌株中對于脂肪酶產量控制關系及機理此前還未見報道,同時已知AlgR也能夠調節ncRNA RsmZ,故而本文采取基因敲除、lacZ報告基因、EMSA等方法研究AlgR對于lipA的表達調控機制。
研究內容及結果
1. 證實AlgR在轉錄水平控制lipA表達
構建了algR敲除的Pf-5菌株(名為Pf6003),培養測定其生長曲線,并檢測對比敲除菌株中lipA酶活性。結果顯示野生型、algR敲除型Pf-5菌株的呈現一致生長曲線,說明algR的敲除不影響Pf-5的生長(圖A),但是敲除株的總脂肪酶活性顯著下降(圖B)。
此外將lipA的啟動子連接lacZ報告基因、將報告基因質粒分別轉入野生型及突變型Pf-5菌株,后續檢測β半乳糖苷酶(b-galactosidase)活性,發現在敲除突變株中b半乳糖苷酶活性低于野生型(圖C)。通過RT-PCR檢測lipA的mRNA表達,顯示突變株中lipA mRNA水平降低(圖D)。
同時通過lacZ報告基因實驗顯示algR的補償過表達在野生型和缺失突變型Pf-5中都能提高β半乳糖苷酶活性及lipA酶活性。
2. AlgR影響rsmX/rsmY/rsmZ的表達
使用RT-PCR實驗證實在Pf-5菌株中敲除AlgR基因后,rsmX/rsmY/rsmZ的轉錄水平均上調。
3. AlgR直接結合于rsmZ啟動子序列
本文表達純化了AlgR蛋白、合成了rsmX/rsmY/rsmZ啟動子序列的探針,進行EMSA實驗驗證AlgR蛋白同這些基因啟動子序列的互作關系,證實AlgR蛋白存在直接相互作用、而AlgR蛋白不能結合于rsmX/rsmY的啟動子序列。
4. AlgR通過rsmZ調節lipA的表達
構建了rsmZ敲除的Pf-5菌株(名為Pf6285),并構建了同時雙敲除algR和rsmZ的Pf-5菌株(名為Pf6100),通過lazZ報告基因及酶活力測定顯示,同時敲除algR和rsmZ基因的Pf6100中lipA表達及總酶活性顯著低于algR單獨敲除的菌株,而在algR單獨敲除株中過表達rsmZ能夠使lipA酶表達及活性恢復到野生型水平。
文章小結
本文構建了分別單獨敲除algR或rsmZ的假單胞菌株Pf-5,以及同時敲除algR和rsmZ的菌株,通過lacZ報告基因系統以及細胞總酶活力測定,證實了algR的缺失突變導致lipA水平下降,同時rsmZ的過表達能夠補償algR缺失對于lipA的下調效應,并通過EMSA實驗驗證了AlgR蛋白能直接結合于rsmZ的啟動子序列,說明algR基因是通過rsmZ來調控假單胞菌株Pf-5中lipA的表達水平。
解析文獻
Menggang Li, Jinyong Yan, Yunjun Yan. The Pseudomonas transcriptional regulator AlgR controls LipA expression via the noncoding RNA RsmZ in Pseudomonas protegens Pf-5. Biochemical and Biophysical Research Communications. 487(2017)173-180.
參考文獻
[1] C. Angkawidjaja, S. Kanaya, I. Family, 3 lipase: bacterial lipases secreted by the type I secretion system, Cell Mol. Life Sci. 63 (2006) 2804-2817.
[2] R. Gupta, N. Gupta, P. Rathi, Bacterial lipases: an overview of production, purification and biochemical properties, Appl. Microbiol. Biotechnol. 64 (2004) 763-781.
[3] X.X. Pan, L. Xu, Y. Zhang, X. Xiao, X.F. Wang, Y. Liu, H.J. Zhang, Y.J. Yan, Efficient display of active Geotrichum sp. lipase on Pichia pastoris cell wall and its application as a whole-cell biocatalyst to enrich EPA and DHA in fish oil, J. Agric. Food Chem. 60 (2012) 9673-9679.
[4] R. Aravindan, P. Anbumathi, T. Viruthagiri, Lipase applications in food industry, Indian J. Biotechnol. 6 (2007) 141-158.
[5] I.B. Romdhane, A. Fendri, Y. Gargouri, A. Gargouri, H. Belghith, A novel thermoactive and alkaline lipase from Talaromyces thermophilus fungus for use in laundry detergents, Biochem. Eng. J. 53 (2010) 112-120.
[6] J. Jeganathan, A. Bassi, G. Nakhla, Pre-treatment of high oil and grease pet food industrial wastewaters using immobilized lipase hydrolyzation, J. Hazard. Mater 137 (2006) 121-128.