編者按

 患者來源類腫瘤細胞簇 （Patient-Derived Tumor - Like Cell Cluster，PTC） 簡稱微腫瘤或微腫瘤 PTC，是一種新型的原代3D腫瘤模型，該模型在病理組織學特征、分子遺傳學特征方面保持了跟原始腫瘤組織的高度相似性。同時，該模型在培養過程中保留了原始腫瘤組織中的成纖維細胞和免疫細胞，從而高度還原了原始腫瘤組織微環境特征。微腫瘤PTC模型可廣泛的應用于腫瘤基礎科學研究、精準治療和新藥研發等領域。

然而，由于微腫瘤PTC模型的構建及應用涉及到多種技術，流程多，影響因素多，目前，國內對微腫瘤PTC模型構建、鑒定、藥敏檢測等操作尚未建立規范標準。為此，由北京大學未來技術學院席建忠教授和北京大學腫瘤醫院季加孚教授牽頭，聚集來自國內知名醫院的肺癌、乳腺癌、婦科腫瘤、腦腫瘤、胃腸腫瘤等多個癌種領域的37位專家教授，經過前期的大量調研和反復討論，圍繞微腫瘤PTC模型定義、模型特征、質量評估、藥敏檢測及技術要點等多方面，組織編寫了《微腫瘤模型構建及藥敏檢測技術中國專家共識 （2023年版）》，以利于推動和指導微腫瘤PTC模型構建以及基于此模型藥敏檢測技術的應用。該專家共識的發布為新型無支架微腫瘤PTC模型在基礎科研、醫藥研發以及腫瘤精準醫療領域中的應用與發展奠定了堅實基礎。

文章題目

微腫瘤模型構建及藥敏檢測技術中國專家共識 （2023年版）

推薦單位：中國生物醫學工程學會類器官與器官芯片分會，中國醫藥生物技術協會基因檢測技術分會

發表期刊：《生物醫學轉化》雜志

通信作者：席建忠，山西朔州人，教授，博士生導師，主要從事腫瘤精準醫學研究。E-mail：jzxi@pku.edu.cn；

季加孚，內蒙古呼和浩特人，教授，博士生導師，主要從事胃癌臨床與轉化研究。E-mail：jijiafu@hsc.pku.edu.cn

基金項目：國家自然科學基金項目 （82150005）；北京協和醫院中央高水平醫院臨床科研專項2022年?？铺嵘媱濏椖?（2022-PUMCH-B-005）

01、引 言

根據美國癌癥學會 《2022 年全球癌癥統計數據》 顯示，癌癥仍然是威脅人類健康的重大疾病。雖然測序等各種組學技術的快速發展加速了對癌癥發病機制的了解以及癌癥創新醫藥的研發，但由于不同個體、同一個體不同時期腫瘤的生物學特征和生物學行為存在較大差異，使得腫瘤臨床治療和新藥研發面臨較多不確定性。

體外腫瘤模型，尤其是源自患者的原代腫瘤模型是開展腫瘤研究以及服務患者個體化精準治療的重要工具。目前，研究者已開發了多種類型的體外腫瘤模型，包括 2D 培養的腫瘤細胞系和患者來源的腫瘤移植瘤模型 （Patient -Derived Tumor Xeno‐graft，PDX）。這些模型在腫瘤基礎研究、轉化應用領域得到了廣泛的應用。但是，腫瘤細胞系在體外培養的傳代培養過程中，病理特征和遺傳特征已經發生了巨大改變。而PDX模型雖然在分子生物學、組織學和病理學特征等方面較好地保持了與原始腫瘤的一致性，但其在傳代過程中，人的基質細胞會逐漸被小鼠基質細胞替代，導致腫瘤微環境失真，從而影響研究結果的準確性。此外，建模成功率和時間的影響也限制了 PDX 模型在個體化精準醫療中的應用。

近年來，隨著生物工程技術的發展，新一代的臨床前體外 3D 腫瘤模型逐漸涌現，此類模型特點是拋棄傳統 2D 培養方式，以基于支架或無支架方式在體外進行3D腫瘤培養。目前，3D腫瘤模型中較為突出的是腫瘤類器官（Patient - Derived Organoids，PDO）。PDO在較大程度上保留了原始腫瘤組織的分子遺傳學特征、表觀遺傳學特征及病理特征，可一定程度上再現腫瘤細胞的異質性。

但是，目前 PDO 培養方法多種多樣，尚未形成統一規范，且培養成本高，臨床轉化應用尚存在局限。另一種基于自組裝懸浮 3D 培養的腫瘤模型，即患者來源類腫瘤細胞簇 （Patient-Derived Tumor-Like Cell Cluster，PTC），簡稱微腫瘤或微腫瘤PTC，因其高腫瘤保真性、標準化培養和周期短等特點，逐漸凸顯出在臨床轉化應用中的優越性，有望更好地服務于腫瘤患者，實現臨床個體化精準用藥。

以微腫瘤 PTC 模型為基礎的藥敏檢測技術可為臨床制定個體化精準用藥方案提供依據，提高患者的臨床獲益。為了推動微腫瘤 PTC 模型以及基于該模型的藥敏檢測技術在基礎科研、轉化醫學以及臨床診療中的應用，中國生物醫學工程學會類器官與器官芯片分會組織國內外相關領域專家，基于目前國內外研究報道制定本專家共識。微腫瘤PTC模型及其藥敏檢測技術尚處于快速研發階段，其技術細節仍在不斷完善的過程中。因此，后續將會根據研究進展，對本共識進行修訂。

02、微腫瘤PTC模型概述

微腫瘤PTC是一種新型無需水凝膠支架、且基于患者來源的體外原代 3D 腫瘤模型。微腫瘤 PTC是將患者來源的新鮮腫瘤樣本在體外經單細胞化處理，在低黏附培養皿中采用微腫瘤PTC專用培養基懸浮培養 2-7天，以腫瘤細胞為主的多組分細胞自組裝聚集形成的3D腫瘤微球，此類3D腫瘤微球質地均勻、形態近似球狀、直徑在 40~300 μm。

微腫瘤PTC模型的培養技術是在傳統腫瘤微球（Sphere）的培養基礎上，通過對比分析傳統體外培養的腫瘤微球與其配對原始腫瘤組織之間關鍵信號通路的差異，針對影響生長、細胞相互作用等的關鍵信號分子，通過添加生長因子或抑制劑來優化培養條件，使得原代腫瘤細胞能夠快速增殖的同時與微環境細胞自組裝形成3D微球，此類3D微球被稱為微腫瘤 PTC。

該技術的核心主要在于兩方面，一是采用溫和細胞解離試劑處理患者腫瘤組織，從而最大程度保證組織中腫瘤細胞以及微環境細胞組分的活力；二是根據腫瘤類型，配制特殊無血清培養基，利用懸浮培養體系對消化獲得腫瘤單細胞懸液進行體外培養。由于不同類型腫瘤的組織特征、細胞表型、微環境特征存在一定差異，因此，微腫瘤 PTC 模型培養需要針對不同類型的腫瘤開發專用培養基及相應的組織解離體系。目前已公開的數據顯示，研究人員已針對胃癌、結直腸癌、乳腺癌、肺癌、膽囊癌、腦腫瘤、宮頸癌、卵巢癌、子宮內膜癌、尿路上皮癌、骨與軟組織肉瘤等多種實體腫瘤類型建立了微腫瘤PTC模型培養條件，與此同時也在積極開發更多類型腫瘤的培養體系，包括一些罕見腫瘤類型。

01、專家共識1

微腫瘤 PTC模型是將患者來源新鮮腫瘤組織樣本，經單細胞化處理后在低黏附培養皿和微腫瘤 PTC 專用培養基中懸浮培養，以腫瘤細胞為主的多組分細胞自組裝聚集形成形態近似球體、直徑在 40~300 μm 的 3D 腫瘤微球，即為患者來源類腫瘤細胞簇 （Patient - Derived Tumor - Like Cell Cluster，PTC），簡稱為微腫瘤或微腫瘤 PTC。

根據科研和臨床需要，推薦胃癌、結直腸癌、乳腺癌、肺癌、膽囊癌、腦腫瘤、宮頸癌、卵巢癌、子宮內膜癌、尿路上皮癌、骨與軟組織肉瘤開展微腫瘤PTC模型培養。

善的過程中。因此，后續將會根據研究進展，對本共識進行修訂。

03、微腫瘤PTC模型的特點

微腫瘤PTC模型培養所需要的樣本量少，最少僅需20 mg患者來源的新鮮組織樣本，樣本類型涵蓋了手術切除腫瘤組織、穿刺活檢組織、內鏡活檢組織以及胸腔/腹腔惡性積液等，較高程度上滿足了科研和臨床應用需求。來自新鮮腫瘤組織樣本或腫瘤惡性積液的單細胞成分在微腫瘤 PTC 培養體系中，培養2-7天即會形成3D腫瘤微球，培養周期相較于目前 2D 或其他 3D 體外原代腫瘤模型短，且微腫瘤 PTC 的培養成功率整體可達 85%以上。

體外腫瘤模型技術的關鍵在于此類模型能夠在體外真實模擬患者體內腫瘤的生物學特征。因此，針對微腫瘤 PTC 模型，研究人員開展了多方面的特征檢測。目前，通過蘇木精-伊紅染色、免疫組織化學染色、免疫熒光檢測以及基因測序從細胞形態學、組織病理學以及分子遺傳學等多方面證實，體外培養獲得的微腫瘤 PTC 模型保持了與原始腫瘤組織的高度相似性。蘇木精-伊紅染色顯示體外培養的微腫瘤 PTC 與原始腫瘤組織在病理學特征上保持了相似性。

針對特定腫瘤中重要的腫瘤標志物，例如乳腺癌的雌激素受體、孕激素受體和人表皮生長因子受體2（Human Epidermal Growth Factor Receptor 2，HER2） 的表達水平，微腫瘤 PTC 模型也保持了與原始腫瘤組織的高度一致。從基因測序對微腫瘤 PTC基因組特征的分析顯示，該模型較高程度上保留了原始腫瘤組織關鍵基因變異信息。

此外，微腫瘤 PTC模型中包含多種腫瘤組織來源的細胞類型，包括腫瘤上皮細胞、成纖維細胞、間質細胞、肥大細胞、巨噬細胞、自然殺傷細胞、T細胞、B 細胞等，在一定程度上模擬了原始腫瘤微環境特征。但在目前的培養體系中，微腫瘤 PTC 模型雖然含有內皮細胞，但并不能形成血管，因此，不能完全反應原始腫瘤組織中的血管系統特征。

02、專家共識2

微腫瘤 PTC模型保留了原始腫瘤的組織病理學特征、分子遺傳學特征等表型，同時該模型中保留了多種腫瘤微環境細胞組分，在一定程度上模擬了腫瘤微環境特征，高度還原了患者體內腫瘤細胞與微環境細胞真實的相互作用情況。

針對微腫瘤 PTC 培養技術成熟的癌癥類型，推薦臨床手術切除樣本、穿刺活檢、內鏡活檢以及惡性積液樣本進行微腫瘤PTC模型培養。

04、微腫瘤PTC模型的質量控制

3.1 腫瘤組織采集、保存、運輸注意事項

腫瘤樣本采集、保存、運輸過程的質量控制對于微腫瘤 PTC 模型培養至關重要，直接影響微腫瘤 PTC 模型的培養成功率。微腫瘤 PTC 培養基于腫瘤患者的組織樣本，涉及個人信息和生物樣本數據信息等，因此，在樣本采集前應在充分告知、尊重供者權利的前提下獲得患者知情同意書。

臨床腫瘤樣本需要專業技術人員在無菌條件下采集獲取。針對不同類型腫瘤樣本所需的大小略有不同，對于手術切除樣本建議重量≥20 mg；對于穿刺活檢樣本建議至少穿刺 2 條且每條長度≥1 cm；對于內鏡活檢樣本建議至少獲取 2塊且每塊直徑≥2 mm；對于惡性腫瘤積液樣本根據腫瘤細胞含量而定，建議不少于 100 mL。樣本采集過程中，應盡量縮短組織樣本離體時間，以保證組織樣本中的細胞活力并減少污染。此外，由于手術切除腫瘤樣本中常包含一些壞死組織、癌周組織等，因此，在取樣時應嚴格注意采集部位為新鮮癌組織區域。

采集獲得的手術切除樣本、穿刺活檢和內鏡活檢樣本，應在采集后立刻保存于含 5 mL 樣本保存液的無菌保存管中。胸腹水惡性腫瘤積液等液體樣本應用無菌引流袋保存。采集獲得的腫瘤樣本需低溫 （2℃～8℃） 保存，并在此條件下24 h內運輸到實驗室。實驗室在收到樣本后，需盡快開展樣本的消化處理和微腫瘤 PTC 模型構建，并及時記錄樣本相關臨床資料、收樣狀態等相關信息。

03、專家共識3

擬進行微腫瘤 PTC培養的新鮮腫瘤樣本必須是包含活的腫瘤細胞、新鮮無污染的臨床樣本，取樣過程需在無菌環境下進行，避免微生物污染。采集的活檢樣本不少于2條/塊，手術切除樣本重量≥20 mg，惡性積液體積≥100 mL?；顧z和手術切除樣本取樣后需立即放置于微腫瘤 PTC 專用保存液中。所有樣本均需在 2℃～8℃條件下于24 h內運輸到實驗室。

3.2 微腫瘤PTC模型質量評估

由于不同癌種、同一癌種不同病理學類型以及不同臨床樣本類型的細胞組分、細胞活力存在一定差異，因此，微腫瘤 PTC 培養成功率也存在一定差異。

惡性腫瘤積液進行微腫瘤 PTC 培養的過程中，一般2-3天即可觀察到已完成自組裝的3D腫瘤微球，包含手術切除組織、活檢組織等在內的實體腫瘤類型樣本在經過單細胞化處理后進行培養，一般 2-3 天即可觀察到微腫瘤 PTC 的形成，最長 7天即可完成 3D 微球自組裝過程。因此，在微腫瘤 PTC 的培養過程中，如 7 天內始終無 3D 微球的形成則表明微腫瘤PTC模型培養失敗。

構建成功的微腫瘤 PTC 在用于后續實驗之前需進行特征鑒定和質量評估。在某一類癌種初次開展微腫瘤 PTC 模型構建時，可通過基因組測序、轉錄組測序、特異性免疫熒光或流式細胞術、病理檢測等多方面的技術手段對微腫瘤 PTC 模型的分子遺傳特征、腫瘤微環境特征、組織病理特征等進行表征，分析其與原始腫瘤組織的相似性；

針對微腫瘤 PTC 模型培養技術已成熟、且已經通過測序等多技術手段與原始腫瘤組織進行了相似性分析的癌種，則不必每次培養均開展以上檢測。通過蘇木精-伊紅染色和免疫組織化學染色可分析微腫瘤PTC中腫瘤細胞的含量比例、細胞形態特征、病理標志物水平以及關鍵生物標志物狀態，以明確體外培養的微腫瘤 PTC 模型準確保留原始腫瘤組織關鍵病理特征。

原代腫瘤培養中微生物污染是一項不確定因素，且已有研究表明，微生物污染嚴重影響細胞生物學實驗的準確性和可重復性。因此，培養成功的微腫瘤 PTC需開展微生物檢測，包括細菌、真菌、支原體，確保培養物中不存在以上微生物污染，方可用于后續科研或藥敏檢測等試驗。

04、專家共識4

腫瘤單細胞懸液在 PTC專用培養基中培養 2-7 天，即可觀察到 PTC 腫瘤微球的形成。如7天內始終無PTC腫瘤微球的形成則表明培養失敗。特定癌種微腫瘤 PTC 模型培養技術建立之初，應通過基因組測序、轉錄組測序、免疫熒光、IHC等多技術手段鑒定表型。每一個成功構建的微腫瘤 PTC 開展細菌、真菌、支原體檢測以排除微生物污染，微生物檢測陰性的微腫瘤 PTC 樣本方可應用于后續科研或藥敏檢測試驗。

05、基于微腫瘤PTC的藥敏檢測

隨著科學技術的不斷發展，腫瘤臨床治療手段日趨多樣化，但藥物治療仍是腫瘤治療中必不可少的手段。雖然以二代測序 （Next Generation Sequencing，NGS） 為主的基因檢測技術為腫瘤患者個體化精準用藥提供了重要支持，但NGS檢測主要局限在指導靶向藥物的臨床應用，而針對腫瘤治療中廣泛應用的化療藥物，以及以免疫檢查點抑制劑為代表的新興免疫治療藥物的臨床用藥方面，現有 NGS 技術的指導價值有限。同時，在臨床實際用藥中，接受單一藥物治療的患者較少，大部分患者的治療方式為多藥物聯合治療，包括化療藥物聯合、化療聯合靶向、免疫聯合化療等，此類聯合治療方式缺乏明確標志物進行療效預測。

此外，腫瘤演進過程中具有較高異質性，使得不同時期腫瘤細胞的生長速度、侵襲能力以及對抗腫瘤藥物的敏感性具有較大差異，為腫瘤臨床治療帶來重大挑戰。因此，近年來，基于患者個體的原代腫瘤模型開展體外抗腫瘤藥物敏感性檢測以提前預測臨床療效的技術開始受到廣泛關注。

微腫瘤 PTC 模型具有所需樣本量少、培養周期短、培養成功率高、且高度保留了原始腫瘤組織特征，是開展抗腫瘤藥敏檢測的理想模型。微腫瘤 PTC 藥敏檢測基本原理是基于患者個體腫瘤樣本，通過體外實驗手段檢測其對不同抗腫瘤藥物的敏感性程度，該過程涉及從醫院到檢測實驗室的多方面流程?；谖⒛[瘤 PTC 模型，可預測靶向腫瘤細胞產生細胞毒性作用的藥物療效，包括化療藥物（見附件一）和部分靶向藥物（見附件二）等。

在微腫瘤 PTC 模型中，可對單一化療/靶向藥物以及化療/靶向藥物聯合的敏感性進行預測，可通過對比不同藥物或不同藥物組合對腫瘤3D微球的殺傷效率差異，提前預判不同藥物治療方案在患者個體中可能產生的療效，從而為患者用藥選擇提供參考。

在微腫瘤PTC模型中開展抗腫瘤藥物敏感性檢測時，需全面了解待檢測藥物的抗腫瘤殺傷原理和作用靶點，從而明確檢測結果的臨床參考意義。針對部分需經過體內代謝產生抗腫瘤活性的化療藥物（如卡培他濱等），利用微腫瘤 PTC開展藥敏檢測時應采用其活性成分，如5-FU代替卡培他濱等。

此外，微腫瘤PTC模型不具備模擬體內腫瘤血管系統特征，不能預測抗血管靶向藥物的臨床療效，因此不推薦應用于此類抗腫瘤藥物的敏感性檢測。目前，基于微腫瘤 PTC 模型的藥敏檢測技術已開展多項大型臨床研究。根據已發表的臨床試驗數據顯示，基于微腫瘤 PTC 模型開展的藥敏檢測體系預測胃腸腫瘤藥物臨床療效的準確性達到了96.6%， 預測乳腺癌臨床療效的準確性可達91.4%，預測肺癌藥物臨床療效的整體一致率也超過 89.0%。

這些研究表明，基于微腫瘤 PTC 模型的藥敏檢測技術在指導腫瘤患者個體化精準用藥方面具有廣泛的臨床應用前景。

05、專家共識5

鑒于微腫瘤 PTC模型生物學特征與原始腫瘤的高度相似性，推薦此模型用于抗腫瘤藥物敏感性檢測?？蓹z測藥物包括化療藥物和部分抗腫瘤靶向藥物 （具體信息參見附件），檢測方式可以是單藥也可以是化療藥物或者靶向藥物的組合。

但由于微腫瘤 PTC 模型不可模擬體內代謝環境，在進行抗腫瘤藥物敏感性檢測前，需具體分析藥物的作用機制及作用靶點。微腫瘤 PTC 模型中缺乏血管系統，不推薦利用此模型檢測抗血管生成藥物的敏感性。

06、微腫瘤PTC藥敏檢測技術要點

微腫瘤PTC模型的3D微球源自腫瘤細胞以及腫瘤基質細胞的自發聚集、組裝，因此，同一患者來源組織培養獲得的微腫瘤PTC體系中不同3D微球的細胞組分和表型特征不盡相同。在該背景下，為確保基于微腫瘤 PTC 模型開展的藥敏檢測結果的準確性和可重復性，研究人員開展了大量的論證工作。將培養成功的PTC腫瘤微球按照1～5個、5～10個、10～30個、30～50個或50～100個接種于細胞培養孔中，分析藥敏檢測結果的變異系數。

結果顯示，每個實驗孔中至少加入30～50 個 PTC微球時，藥敏檢測結果變異系數<0.2。此外，研究人員對于藥敏試驗復孔設置也進行了相應驗證，每個藥物方案需設置不少于3個重復可更好地確保實驗結果的可重復性。通過這些研究，確保了微腫瘤 PTC 藥敏檢測結果的可靠性。

此外，研究人員針對微腫瘤PTC藥敏檢測技術建立了一套基于深度學習的人工智能細胞圖像識別系統，利用此類圖像識別系統判讀微腫瘤 PTC藥敏檢測結果，簡化操作步驟的同時進一步減少了人為操作可能引入的結果誤差。為確?；趫D像識別系統結果判讀的準確性，在接種PTC腫瘤微球的操作過程中，切忌產生大量氣泡，以避免影響腫瘤微球圖像的拍攝和表面積智能識別，造成檢測結果偏差。

06、專家共識6

基于PTC腫瘤微球的異質性特點，為保證藥敏檢測結果的準確性和可重復性，利用微腫瘤 PTC開展藥敏檢測實驗需設置平行對照，同時每種藥物方案的檢測需設置不少于 3 個重復孔，且需保證每個實驗孔中的 3D 腫瘤微球數量在30～50個。推薦微腫瘤 PTC 藥敏檢測采用人工智能細胞圖像識別系統來判定結果，運用此類檢測系統需注意接種PTC微腫瘤的操作過程中，切忌產生大量氣泡影響結果判讀。

07、微腫瘤PTC模型及藥敏檢測技術應用前景

基于患者來源體外腫瘤模型開展藥物敏感性檢測的技術在服務腫瘤個體化、精準治療方面具有重要意義和臨床應用價值。目前，基于患者來源腫瘤類器官模型的藥敏檢測的臨床應用研究已有較多報道，初步證實了此類技術能夠在一定程度上預測腫瘤患者的臨床藥物治療療效，相關研究覆蓋了大多數實體腫瘤類型，同時涉及腫瘤進展不同時期的患者和臨床治療進程的不同階段。

微腫瘤PTC模型以及相應藥敏檢測技術體系相較于類器官技術起步略晚，但已在培養周期、藥敏檢測周期、操作標準化、臨床療效預測準確性等多方面展現出不俗表現。微腫瘤PTC藥敏檢測技術可服務于不同腫瘤類型、不同進展時期以及不同治療時期的腫瘤患者，通過代替患者的“體外試藥”方式為臨床治療選擇提供參考。

目前，多項針對微腫瘤PTC藥敏檢測技術在不同實體腫瘤中的應用安全性和有效性的前瞻性臨床研究正在進行中（見表1）。

NCT05280210是一項前瞻性、開放、隨機對照研究，該研究針對病理診斷為腺癌的局部進展胃癌、非低位結直腸癌及腸癌肝轉移患者，擬比較基于微腫瘤PTC藥敏檢測結果進行新輔助化療的患者與采用經驗性輔助化療方案的患者病理有效率的差異。

NCT05424692是一項前瞻性多中心、隨機對照研究，旨在針對中及中晚期可實施根治性手術且需進行術后輔助化療的結直腸癌患者，評價微腫瘤PTC藥敏檢測結果與臨床預后的一致性，探索微腫瘤PTC藥敏檢測技術應用于輔助結直腸癌精準治療的決策價值和指導意義。

NCT04130750/NCT04131881 臨床研究擬探索微腫瘤PTC藥敏檢測技術指導乳腺癌新輔助化療病理完全緩解率 （pathologic Complete Response，pCR）。NCT05473923 研究針對復發高級別腦膠質瘤患者，旨在為包括復發膠質瘤在內的高級別膠質瘤的精準治療臨床實施提供依據，以期改善患者生存和預后。

NCT05767528 研究擬在基層浸潤性膀胱癌患者中，分析微腫瘤PTC藥敏檢測結果與患者臨床治療療效的相關性，評估微腫瘤PTC藥敏檢測預測膀胱癌臨床治療療效的準確性。相信隨著以上臨床試驗的相繼完成和結果公布，將進一步明確微腫瘤PTC藥敏檢測技術可介入臨床治療的最佳時期和可獲益患者群體，為微腫瘤PTC藥敏檢測技術在臨床用藥指導中的應用提供更高級別的循證醫學證據。

08、總 結

微腫瘤PTC模型是一種新型的基于患者來源的、無水凝膠支架培養的原代 3D 腫瘤微球，其高度模擬了患者體內腫瘤的多種生物學特征和表型，并在一定程度上重塑了包含免疫特征在內的腫瘤微環境特征。因為，微腫瘤 PTC 的藥敏檢測結果在一定程度上反應了復雜腫瘤環境對藥物的敏感性，有望為免疫治療相關藥物的敏感性預測引入新的技術手段。

目前，微腫瘤 PTC 模型及其藥敏檢測技術的應用主要集中在乳腺癌、肺癌和消化道系統腫瘤，但在其他實體腫瘤中的應用也在加速推進的過程中。隨著國內外研究的不斷深入以及微腫瘤PTC技術的不斷優化，將為廣泛的實體腫瘤以及一些罕見類型腫瘤提供科學研究和個體化精準治療支持。本專家共識也將隨著微腫瘤 PTC 技術的革新逐漸完善修訂。

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