在蛋白電泳實驗中，燒膠問題堪稱“隱形實驗殺手”。它不僅會導致溴酚藍帶扭曲變形、膠體局部發黃，更會使蛋白質條帶模糊、分離失敗，甚至前功盡棄。其實，燒膠并非無法預防——只要從緩沖液配制、用量控制、溫度調節這三個核心環節入手，并理解其背后的原理，就能顯著提升電泳成功率。下面我們將逐一展開，為你提供既實用又深入的操作指南。
電泳緩沖液不是“大概配配就行”，其濃度直接關系到體系的緩沖能力。濃度過低時，陽極端的緩沖液在電泳過程中無法有效維持pH穩定，氫離子積累導致pH快速下降，局部過熱從而燒膠。
進階建議：
● 推薦使用Tris-Glycine系統時，常配制10×貯存液，使用時稀釋至1×。務必確認pH值（通常為8.3）。
● 回收的電泳液可以作為外槽電泳液重復使用1-2次，但為了取得最佳的電泳效果，應使用新配置的電泳緩沖液。
● 可備有pH試紙或便攜pH計，電泳前快速檢測緩沖液pH是否異常。
陽極端緩沖液必須足量，以滿足整個電泳過程的離子導通與緩沖需求。但值得注意的是：陽極端與陰極端液面絕對不能相連，否則會導致短路，電流異常升高，瞬間發熱燒膠。
進階建議：
● 建議兩側液面高度差保持在 1 cm 以上，并確保電泳槽放置平穩。
● 電泳前可目視檢查兩側液面是否獨立，必要時用吸管稍作調整。
● 如果發現電泳儀電流顯示異常飆升，應立即停止運行，檢查是否漏液或短路。
低溫會顯著降低緩沖液中離子的遷移速率和緩沖體系的反應效率，使得局部電阻增大、產熱增加，燒膠風險隨之升高。
進階建議：
● 冬季或空調房內實驗前，可將緩沖液用恒溫水浴鍋預熱至25–30℃，微波爐短時加熱也可行，但需混勻并測溫避免過熱。如條件允許，可在電泳槽周圍放置保溫板或室溫維持在20℃以上。
● 夏天實驗時，可進行冰浴，避免電泳溫度過高。
a. 膠體局部燒穿怎么辦？
立即停止電泳，檢查該區域是否有氣泡、雜質或緩沖液不足。
b. 多次重復使用同一批次的電泳緩沖液容易燒膠?
是的，建議每次使用新配置的電泳緩沖液，特別是進行長時間或高電壓電泳時。
c. 不同蛋白分子量范圍是否需調整緩沖體系？
是的，大分子量蛋白電泳可使用Tris-Acetate體系，緩沖配方和電壓也需相應調整。
你是不是也曾被電泳燒膠困擾？
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