一個小細胞可能會把人弄得吃不下，睡不著，焦頭爛額？？？信不信還真的有這樣的事情 ，可能整個實驗下來計劃是三個月左右，但實際有時候出手的第一步就遇到了攔路虎，why？細胞總是養不好；天啊，馬上就到了三個月了，SO sad，下面我們就來看看細胞主要的培養步鄹吧。

選對培養基很重要：

培養某一類型細胞沒有固定的培養條件。在MEM中培養的細胞，很可能在DMEM或M199中同樣很容易生長?？傊走xMEM做粘附細胞培養、RPMI-1640做懸浮細胞培養是一個好的開始，各種目的無血清培養最好首選AIM V（12005）培養基（SFM）。 

GlutaMAX-I是什么？培養細胞如何利用GlutaMAX-I？這個二肽有多穩定？

     GlutaMAX-I 二肽是一個L-谷氨酰胺的衍生物，其不穩定的alpha-氨基用L-丙氨酸來保護。一種肽酶逐漸裂解二肽，釋放L-谷氨酰胺供利用。GlutaMAX-I二肽非常穩定，即使在121磅滅菌20分鐘，GlutaMAX-I 二肽溶液有最小的降解，如果在相同條件下，L-谷氨酰胺幾乎完全降解。

    酚紅在培養基中被用來作為PH值的指示劑：中性時為紅色，酸性時為黃色，堿性時為紫色。研究表明，酚紅可以模擬固醇類激素的作用，（特別是雌激素）。為避免固醇類反應，培養細胞，尤其是哺乳類細胞時，用不加酚紅的培養基。由于酚紅干擾檢測，一些研究人員在做流式細胞檢測時，不使用加有酚紅的培養基。

培養基中丙酮酸鈉的作用是什么？

     丙酮酸鈉可以作為細胞培養中的替代碳源，盡管細胞更傾向于以葡萄糖作為碳源，但是，如果沒有葡萄糖的話，細胞也可以代謝丙酮酸鈉。 

      一旦您在新鮮培養基中添加了血清和抗生素時，您應該在兩到三周內使用它。因為一些抗生素和血清中的基本成分在解凍后就開始降解。 

      大部分添加物和試劑最多可以凍融3次，如果次數更多都會在包含蛋白的溶液引起一定水平的降解和沉淀，將會影響它的性能。這個特別在血清上體現的很明顯，有些血清沉淀特別多，客服都會告訴您這個是血清的析出蛋白，讓您不要離心直接使用也是這個原理 ，因為離心之后您的血清連那么點營養蛋白都沒有啦 

     38 在溶解的一周內使用貯存在4℃冰箱中的液體胰蛋白酶溶液。胰蛋白酶在4℃就可能開始降解，如果在室溫下放置超過30分鐘，就會變得不穩定 

      同時細胞的狀態也非常重要，有些老師認為，腫瘤細胞反正可以無限傳代，那么我就用之前傳過188代的細胞來做實驗又如何，要是細胞的形態好，可能真的沒有什么問題，但是若細胞形態也不行，那要考慮是否用這個細胞了 ，一般細胞的形態不好涉及到三個方面：1.培養基使用的不對嚴重改變細胞的營養環境，細胞為自救不得不變異以求生長；2.操作手法不對，造成細胞污染等，3.傳代次數太多，因為每次傳代都會給細胞造成輕微的損傷，導致細胞在傳代之后不斷的修復，修復的細胞需要的衍生物，比如血清，培養基，可能會根據配方和批次的不同，給細胞造成不同程度的變異。 

So easy的操作手法：

     第一見細胞的時候，都不知道從何入手，太嬌貴了 ，怎么辦？其實，我們只要記住一點就可以了：無菌操作，無菌操作，無菌操作，重要的事情說三遍，之后我們就可以放開手腳，大干一場了。 

Step 1 ： 冷凍管應如何解凍？

取出冷凍管后，須立即放入37 C水槽中快速解凍，輕搖冷凍管使其在1分鐘內全部融化，并注意水面不可超過冷凍管蓋沿，否則易發生污染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時，必須注意安全，預防冷凍管之爆裂。注意：除少數特別注明對DMSO敏感的細胞復蘇需要離心外（神經類以及不容易貼壁的），絕大部分細胞株（包括懸浮性細胞），在解凍之后，應直接放入含有10-15ml新鮮培養基之培養瓶中，待隔天再置換新鮮培養基以去除DMSO 即可。

如此可避免大部分解凍后細胞無法生長或貼附的問題。 

Step 2:細胞該怎么培養？

       培養關鍵點還在傳代操作，一想到傳代，天啊 ，會不會很復雜？首先我們要等到細胞到達80%-85%的密度再進行操作，為什么是這個密度？因為這個密度剛好是細胞生長的鼎盛期，因為細胞和細胞間都會有信號通路互相聯系，這個時候他們都共同商量好了要努力生長，然后傳代之后，他們看到空間還是這么大，就會把努力生長的精神一直傳承下去，直到他們過了生長鼎盛期到生長平頂期為止。當然有些貪婪的聚集成簇生長的細胞，他們會不辭辛苦，日以繼日的生長，直到培養基不能給他們提供一點養分為止。 

                                            Raw264.7細胞出庫圖

Step 3:不可忽略的重要的傳代和凍存過程：

1.37度水浴加熱完全培養基，0.25% 胰蛋白酶/EDTA溶液，我們不建議在37度溫度下加熱試劑和培養基，水浴優先使用。

2. 用DPBS將細胞輕輕漂洗兩次以去除殘留的完全培養基。

3. 加入1 ml 胰酶消化液到培養瓶中。打十字搖動培養瓶，以確保胰酶完全覆蓋細胞。用顯微鏡觀察細胞形態的變化。

5.在消化時，當細胞變得橢圓透亮，并且間隙分明的時候，輕輕敲打培養瓶的側面，將細胞從表面剝離出來。在顯微鏡下檢查，確保所有的細胞都開始呈流沙狀脫落。

6.. 向培養瓶中加入5 ml含有血清的完全培養基，將分離的細胞轉移到15ml離心管中。并用PBS沖洗培養瓶收集殘留的細胞。

7.將15毫升離心管以1000 rpm離心5分鐘，收集消化好的細胞沉淀。

8.用新鮮的培養基將細胞沉淀重懸并且按比例分瓶，完成傳代。

若無需傳代，直接加入配制好的凍存液（凍存液配制方法：DMSO:FBS=1:9）或者買商業化的凍存液直接按每毫升不低于50萬的細胞量凍存細胞即可

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