通常情況下，樣本中的糖基轉移酶和糖苷酶的濃度很低，很難直接檢測。通過測量酶的底物或產物的變化來確定糖基轉移酶(一種添加糖基的酶)或糖苷酶(一種去除糖基的酶)的存在則成為更實用的方法之一。對于糖基轉移酶，底物數量的減少和酶產物數量的增加是檢驗酶存在和活性的依據。相反，底物的減少則意味著糖苷酶的存在。通過使用凝集素來跟蹤底物和產物的相對量，可以建立多種檢測方法來監測酶的活性。
為了在體內特定位點引發抗炎反應，Pagan等人(Ref.9)制備了半乳糖基轉移酶-唾液酸轉移酶-IgG融合蛋白作為單一大分子。然后，他們通過將這一重組大分子與供體核苷酸-糖和受體胎球蛋白一起孵育，并使用凝集素印跡監測酶產物，來檢測這一融合蛋白是否保留了酶活性。
精選文獻
• Determine the activity of recombinantly expressed proteins (Ref. 9)
• Demonstrate the activity and specificity of bacterial enzymes (Ref. 24)
• Verify and validate genetic over- or underexpression systems (Ref. 20)
• Discerning enzymatic presence in novel systems (Ref. 44)
• Monitor glycosylation output after glycosyltransferase manipulation (Ref. 101)
實驗流程概覽
樣本制備
• 制備酶樣本；
• 制備酶底物. 通常是活的或固定的細胞、溶液中的或固定的糖蛋白、溶液中的或固定的純化的糖。
封閉
• 為了減少與底物的非特異性相互作用，可考慮在系統中加入阻斷劑；如：在室溫下，在Vectorlabs的CFB溶液中(Carbo-Free™ Blocking，
SP-5040-125)孵育底物30-60分鐘；
• 用兼容的洗滌緩沖液室溫下清洗兩次(2×)。
反應
• 加入含有酶的反應緩沖液，糖基轉移酶需要核苷酸-糖供體, 糖苷酶則不需要。這兩種酶對pH值和陽離子濃度都非常敏感, 因此需要相應地優化反應緩沖液；
• 將酶與底物輕柔混合孵育；時間和溫度需用戶進行優化，我們建議以室溫和37°C之間孵育2-4 小時作為起點；
• 盡可能將反應物與原材料分離，用兼容的清洗緩沖液室溫下清洗兩次(2×）。
檢測
• 加入熒光標記凝集素，室溫下(或4℃條件下孵育過夜)與反應物共孵育1小時。根據實驗需求，也可選擇使用生物素標記的凝集素；
• 用兼容的洗滌緩沖液室溫洗滌三次(3×)。
顯色
• 如果使用了生物素標記的凝集素，此處需加入熒光標記鏈霉親和素繼續孵育；
• 用兼容的洗滌緩沖液室溫洗滌二次(2×)。
信號采集
• 圖像采集，數據分析。
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