操作步驟：
1. 將懸浮細胞培養至對數生長期，用PBS洗滌細胞，離心300g，5分鐘。去除上清液，重新懸浮細胞至適當濃度（如1×10^5）
2. 接種細胞：用含10%細胞完全培養配成單個細胞懸液，以每孔1000-10000個細胞接種到96孔板，每孔體積200ul。
3. 培養細胞：在37℃、5%CO2的條件下孵育16-48小時，然后在倒置顯微鏡下觀察。
4. 呈色：取出96孔板，將每孔上清液抽出。每孔加入100ul的預先稀釋好的MTT溶液（5mg/ml，即0.5%MTT），使細胞與mtt試劑充分接觸后，繼續培養4小時,使細胞代謝mtt，形成紫色結晶物;
5. 溶解結晶物：對于懸浮細胞，推薦跳過某些步驟并直接進行離心（1000轉x10分鐘），然后小心吸掉上清液。接著，每孔加入100ul的二甲基亞砜（DMSO），置搖床上低速振蕩10分鐘，使結晶物充分溶解。
6. 比色：在酶聯免疫檢查儀上，選擇OD570nm（630nm校準）測量各孔的吸光值。
Thp-1 cells Line（啟達生物，catlog：CD0122)
K-562 cells Line（啟達生物 catlog：CD0115)
注意事項：
6. 實驗環境：確保實驗在無菌、無塵、恒溫（37℃）和恒濕的環境中進行，以維持細胞的最佳生長條件。
7. 溶解結晶物時應充分振蕩，以確保完全溶解。
8. 細胞計數：在接種細胞時，確保準確計數，因為細胞數量直接影響實驗結果。
9. MTT溶液：MTT溶液需現配現用，避免長時間儲存導致活性降低。
10. 避免交叉污染：在操作過程中，注意更換吸頭和管尖，避免不同孔之間的交叉污染。
11. 離心條件：在離心過程中，確保轉速和時間設置正確，避免對細胞造成損傷。
12. DMSO操作：DMSO具有一定的毒性，操作時需佩戴防護眼鏡和手套，確保安全。
8. 結果解讀：OD值的變化反映了細胞的活性，但需注意排除其他可能干擾因素，如培養基的顏色、氣泡等。
9. 實驗記錄：詳細記錄實驗過程中的所有操作和環境條件，以便后續分析和復查。
以上步驟和注意事項完成后，可以確保實驗的準確性和可靠性，從而得到準確的細胞活性數據。