實驗指南 | 蛋白樣品制備1——細胞裂解完全指南-技術前沿-資訊-生物在線

實驗指南 | 蛋白樣品制備1——細胞裂解完全指南

作者:上海萬生昊天生物技術有限公司 2025-12-09T00:00 (訪問量:20308)

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Western Blot(WB)實驗中,細胞裂解是蛋白樣品制備的第一步,也是影響實驗成敗的關鍵。有效的裂解能完整釋放目標蛋白,并保持其活性與結構,為后續步驟奠定基礎。

 

蛋白質提取的目的是破壞細胞膜與細胞器膜,將蛋白釋放到溶液中,同時保持其完整性?;驹硎抢没瘜W、物理或機械方法破碎細胞結構。

01
不同來源的蛋白質樣品提取方法

提取方法.jpg

02
細胞裂解五大常見誤區

 

誤區一:采用“一刀切”的裂解方案

錯誤做法:許多研究者習慣用同一套裂解流程處理所有樣品(如組織、貼壁細胞、懸浮細胞),忽略其結構差異。

     

原因分析:動物組織柔軟但需研磨;植物細胞有細胞壁需機械破碎;微生物(如細菌)細胞壁成分特殊。若方法不當,會導致裂解不完全或蛋白降解。

   

正確做法:根據樣品特性選擇破碎方法。例如,動物組織優先用勻漿器研磨,貼壁細胞可直接加裂解液吹打;植物組織則采用珠磨法或高壓勻漿法等機械破碎方法。

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誤區二:選錯裂解液

錯誤做法:隨意選用高強度裂解液(如強RIPA),認為“越強越好”,或忽略下游實驗(如Co-IP需避免SDS)。

   

原因分析:高強度裂解液可能破壞蛋白互作或導致過度變性;而弱裂解液對膜蛋白提取不足。

  

正確做法:根據目標蛋白的溶解性和實驗目的選擇裂解液。例如:

可溶性蛋白:用中/弱強度RIPA或NP-40裂解液。

膜蛋白或核蛋白:優選強RIPA裂解液。

Co-IP實驗:避免離子型去垢劑,選擇溫和裂解液。

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誤區三:蛋白酶抑制劑使用不當

錯誤做法:抑制劑添加不及時(如裂解液配制后久置)、濃度不準確,或忽略磷酸酶抑制劑(用于磷酸化蛋白研究)。

  

原因分析:細胞裂解釋放的內源性蛋白酶會快速降解目標蛋白;PMSF等抑制劑在水中半衰期短,需現用現加。

  

正確做法

現用現配:抑制劑在裂解前1-2分鐘加入,確?;钚?。建議直接使用商品化蛋白酶抑制劑Cocktail,覆蓋譜廣且穩定。

濃度精準:參考蛋白酶抑制劑的工作濃度表,例如PMSF常用0.1-1.0 mmol/L。

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誤區四:忽略操作溫度與時間控制

錯誤做法:裂解過程在室溫下進行,或裂解時間過長(如超過30分鐘),認為“時間越久越徹底”。

  

原因分析:高溫會加速蛋白酶活性和蛋白變性;過度裂解可能釋放基因組DNA,導致樣品粘稠。

  

正確做法

全程低溫:操作在冰上進行,裂解液預冷。

時間優化:多數細胞裂解僅需1-2秒,組織需研磨至勻漿;離心步驟在4℃下進行。

注意事項:若裂解產物出現透明膠狀物(基因組DNA),可短暫超聲處理或離心取上清。

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誤區五:樣品儲存與處理不規范

錯誤做法:裂解后樣品反復凍融,或未分裝儲存,直接用于長期實驗。

  

原因分析:凍融循環會破壞蛋白結構,引起聚集或降解。

  

正確做法

分裝保存:裂解產物分裝后于-80℃儲存,避免多次凍融。

現用現制備:組織取材后分裝,裂解后盡快用于下游實驗。

 

03
RIPA裂解液選擇指南

 

貨號 產品名稱 特點 適用范圍

EZPS05-1-100mL

RIPA裂解液(弱)

不含SDS,溫和,保持蛋白互作

IP、Co-IP、可溶性胞質蛋白

EZPS04-1-100mL

RIPA裂解液(中)

中等強度,通用型

常規WB,可溶性及部分膜蛋白

EZPS03-1-100mL

RIPA裂解液(強)

含離子去垢劑,裂解能力強

核蛋白、跨膜蛋白等難溶蛋白

EZPS25-100mL

植物總蛋白裂解液

強效去垢劑+多種抑制劑,防降解

植物樣本,適用于SDS-PAGE電泳、WB、質譜分析等。

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