細(xì)胞培養(yǎng) | 揭秘TGF-β應(yīng)用:肺纖維化研究的利器-技術(shù)前沿-資訊-生物在線

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細(xì)胞培養(yǎng) | 揭秘TGF-β應(yīng)用:肺纖維化研究的利器

作者:蘇州近岸蛋白質(zhì)科技股份有限公司 2025-03-07T00:00 (訪問量:42043)

肺纖維化(Pulmonary fibrosis, PF),特別是特發(fā)性肺纖維化,是一種肺部組織被瘢痕替代、導(dǎo)致功能喪失的疾病。盡管其發(fā)病機(jī)制未完全明確,但近年來在分子病理機(jī)制上有所突破,推動(dòng)了尼達(dá)尼布和吡非尼酮等藥物的上市。這些治療方法能夠在一定程度上減緩病情發(fā)展,但它們通常伴有不良反應(yīng),且無法實(shí)現(xiàn)根本治愈。為了深入研究肺纖維化的發(fā)病機(jī)制和開發(fā)新的治療方法,建立可靠的體外模型至關(guān)重要[1]

 

TGF-β是一種多功能細(xì)胞因子,參與調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、分化和凋亡。TGF-β與細(xì)胞受體結(jié)合后,激活Smad蛋白并調(diào)控基因,促進(jìn)纖維化,還能通過非Smad途徑(如MAPK)加速這一過程。在肺纖維化過程中,TGF-β通路被異常激活,使細(xì)胞外基質(zhì)過度沉積,形成肺疤痕。在特發(fā)性肺纖維化中,TGF-β通路的異常激活是纖維化進(jìn)展的關(guān)鍵因素之一[2]。近年來,利用TGF-β誘導(dǎo)肺相關(guān)細(xì)胞系和肺類器官纖維化模型,已成為研究肺纖維化的熱門方法。

 

提問:為什么選擇TGF-β誘導(dǎo)肺纖維化?

TGF-β建模 vs 傳統(tǒng)模型:肺纖維化研究中的優(yōu)勢對比

對比維度

TGF-β建模

傳統(tǒng)模型(如博萊霉素、放射線、基因編輯)

機(jī)制特異性

精準(zhǔn)靶向纖維化核心通路(TGF-β/Smad信號通路),避免炎癥干擾

非特異性炎癥反應(yīng)[3](博萊霉素)或單一基因功能研究(基因編輯)

實(shí)驗(yàn)可控性

TGF-β濃度、作用時(shí)間可精確調(diào)控,體外48小時(shí)即可誘導(dǎo)穩(wěn)定EMT表型[4]

劑量和時(shí)間難以精確控制,表型不穩(wěn)定

實(shí)驗(yàn)周期

造模周期短(<1周)

周期長(博萊霉素:2-4周;放射線:>4周)

多通路交互模擬

激活Smad3、Col1a1等多靶點(diǎn),模擬纖維化多通路交互[5,6]

基因編輯模型僅聚焦單一基因,難以模擬多通路交互

臨床關(guān)聯(lián)性

與COVID-19后纖維化、IPF等臨床病理高度關(guān)聯(lián),動(dòng)態(tài)模擬局部或彌漫性纖維化[7]

難以模擬病毒性纖維化(如COVID-19后纖維化)

數(shù)據(jù)可重復(fù)性

數(shù)據(jù)重復(fù)性高(>95%),結(jié)果一致性強(qiáng)

數(shù)據(jù)波動(dòng)大,重復(fù)性較低(如博萊霉素模型的炎癥干擾)

操作難度

操作簡單,無需復(fù)雜設(shè)備

操作復(fù)雜(如放射線模型需特殊設(shè)備,基因編輯模型技術(shù)門檻高)

成本效益

試劑成本低,實(shí)驗(yàn)效率高

成本高(如基因編輯模型的構(gòu)建與驗(yàn)證費(fèi)用)

轉(zhuǎn)化價(jià)值

支持抗纖維化藥物篩選與機(jī)制研究,臨床前驗(yàn)證潛力大(如Cilengitide抑制劑)[8]

轉(zhuǎn)化價(jià)值有限,難以直接應(yīng)用于藥物開發(fā)

綜上,TGF-β造模因其機(jī)制靶向性、操作可控性及結(jié)果一致性,成為肺纖維化研究的優(yōu)選工具,尤其適用于信號通路解析和抗纖維化藥物開發(fā)。

 

TGF-β誘導(dǎo)肺纖維化實(shí)驗(yàn)流程

在體外纖維化造模的實(shí)驗(yàn)中,通常會(huì)選擇對TGF-β信號高度敏感的肺泡上皮細(xì)胞(如A549細(xì)胞系)或人胚肺成纖維細(xì)胞(HELF)。推薦采用2–10 ng/mL的TGF-β1進(jìn)行處理24–72小時(shí),根據(jù)細(xì)胞響應(yīng)程度可以適當(dāng)調(diào)整濃度和處理時(shí)間,并對模型進(jìn)行鑒定和分析。

 

鑒定

(1)細(xì)胞形態(tài):可以觀察到細(xì)胞從典型的鵝卵石狀上皮形態(tài)向梭形間質(zhì)形態(tài)的轉(zhuǎn)變;

(2)基因水平:使用實(shí)時(shí)熒光定量PCR(RT-qPCR)技術(shù)可檢測到上皮標(biāo)志基因E-cadherin的表達(dá)降低,以及膠原合成相關(guān)基因Collagen I/III(Col1a1/Col3a1)、α-SMA、Vimentin、結(jié)締組織生長因子CTGF的表達(dá)上調(diào);

(3)蛋白水平:通過WB或ELISA對TGF-β信號通路的下游效應(yīng)蛋白如磷酸化Smad3(p-Smad3)、Collagen I、α-SMA以及炎癥相關(guān)因子IL-6、TNF-α進(jìn)行定量分析[9]。為了評估膠原沉積和細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)重塑,可采用羥脯氨酸(HYP)比色法測定膠原含量,并通過Masson三色染色或Sirius Red染色技術(shù)對膠原纖維進(jìn)行組織化學(xué)染色[10]

體外纖維化模型鑒定指標(biāo):Fibronectin、Collagen I、α-SMA[9]

 

使用 H&E 染色和 Masson 三色染色評估不同實(shí)驗(yàn)組的組織病理學(xué)變化和膠原蛋白沉積[10]

 

(4)功能學(xué)驗(yàn)證:通過Transwell滲透實(shí)驗(yàn)評估細(xì)胞侵襲和遷移能力的變化,以及通過膠原凝膠收縮實(shí)驗(yàn)來證實(shí)肌成纖維細(xì)胞的收縮活性[11]

(5)信號通路分析:通過Western blotting檢測p-Smad3與Smad3的比值來確認(rèn)TGF-β介導(dǎo)的經(jīng)典Smad信號通路的激活狀態(tài),并探究絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)途徑中的p38 MAPK和細(xì)胞外信號調(diào)節(jié)激酶(ERK)的磷酸化水平,以揭示非經(jīng)典信號通路的作用。

 

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產(chǎn)品數(shù)據(jù)

Measured by its ability to inhibit the IL-4-dependent proliferation of TF?1 human erythroleukemic cells. The ED50 for this effect is 4-40 pg/ml

下期預(yù)告:肝纖維化建模

 

參考文獻(xiàn)

[1]Koudstaal, T., Funke-Chambour, M., Kreuter, M., Molyneaux, P. L., & Wijsenbeek, M. S. (2023). Pulmonary fibrosis: from pathogenesis to clinical decision-making. Trends in molecular medicine.

[2]Ong, C. H., Tham, C. L., Harith, H. H., Firdaus, N., & Israf, D. A. (2021). TGF-β-induced fibrosis: A review on the underlying mechanism and potential therapeutic strategies. European journal of pharmacology, 911, 174510.

[3]Yue, X., Shan, B., & A. Lasky, J. (2010). TGF-β: titan of lung fibrogenesis. Current enzyme inhibition, 6(2), 67-77.

[4]Kasai, H., Allen, J. T., Mason, R. M., Kamimura, T., & Zhang, Z. (2005). TGF-β1 induces human alveolar epithelial to mesenchymal cell transition (EMT). Respiratory research, 6, 1-15.

[5]Yang, W., Li, Y., Shi, F., & Liu, H. (2023). Human lung organoid: Models for respiratory biology and diseases. Developmental Biology, 494, 26-34.

[6]Wei, P., Xie, Y., &Tu, Y. (2019). Transforming growth factor (TGF)-β1-induced miR-133a inhibits myofibroblast differentiation and pulmonary fibrosis. Cell death & disease 10, no. 9: 670.

[7]Gaikwad, A. V., Lu, W., Dey, S., Bhattarai, P., Haug, G., Larby, J., & Sohal, S. S. (2023). Endothelial-to-mesenchymal transition: a precursor to pulmonary arterial remodelling in patients with idiopathic pulmonary fibrosis. ERJ open research, 9(2).

[8]Yi, M., Yuan, Y., Ma, L., Li, L., Qin, W., Wu, B., & Liu, B. (2024). Inhibition of TGFβ1 activation prevents radiation‐induced lung fibrosis. Clinical and Translational Medicine, 14(1), e1546.

[9]Liu, P., Miao, K., Zhang, L., Mou, Y., Xu, Y., & Wang, Y. (2020). Curdione ameliorates bleomycin-induced pulmonary fibrosis by repressing TGF-β-induced fibroblast to myofibroblast differentiation. Respiratory research, 21, 1-10.

[10]Li, S., Xu, A., Li, Y., Tan, C., La Regina, G., Silvestri, R., & Qi, W. (2021). RS4651 suppresses lung fibroblast activation via the TGF-β1/SMAD signalling pathway. European Journal of Pharmacology, 903, 174135.

[11]Yamanishi, C., Robinson, S., & Takayama, S. (2019). Biofabrication of phenotypic pulmonary fibrosis assays. Biofabrication, 11(3), 032005.

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