人造視網膜迎來關鍵技術突破:德國團隊高效擴增RGCs存活率,增幅達18倍-技術前沿-資訊-生物在線

人造視網膜迎來關鍵技術突破:德國團隊高效擴增RGCs存活率,增幅達18倍

作者:蘇州近岸蛋白質科技股份有限公司 2026-02-12T00:00 (訪問量:21913)

前言

類器官是多能干細胞(PSCs)或成體干細胞(ASCs)在體外自組織而成的3D結構,因具有超越動物模型的保真度,能在分子、細胞等多層面重現原代組織個性化特征,因此已成為機制探索的重點模型與再生醫學的新希望。

視網膜類器官已經能夠發育出高度組織的核層和叢狀層,但其核心短板始終未被真正解決:視網膜中的投影神經元——視網膜神經節細胞(RGCs)在體外培養條件下難以長期存活,更無法形成成熟、穩定、可記錄的功能性回路。現有的類器官模型缺乏血管網絡導致的內部氧氣和營養供應不足,也缺乏穩定的軸突投影路徑。在這種環境下,RGCs往往在發育中早期就發生變性。數據表明,在標準培養方案下,到第18周時,對照組類器官中的RGCs占比僅剩下1.21% ± 0.20%。這種大規模的細胞凋亡極大地限制了我們對人類RGC功能及其回路連接的研究。

2026年1月12日,波恩大學等機構的研究團隊在期刊Cell Stem Cell上發表了一項突破性成果“Retinal ganglion cell survival and functional maturation in transiently vascularized human retinal organoids”,通過在人視網膜類器官中引入“瞬時血管化”網絡,并將其與微流控軸突引導與多電極陣列記錄平臺結合實現了視網膜神經節細胞在體外條件下的長期存活、電生理成熟以及光感受器驅動的回路級響應這不僅為基礎視網膜研究提供了更生理化的模型,也為視網膜病變藥物篩選提供了全新的平臺。

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01 瞬時血管支持的建立

在視網膜類器官內建立穩定、長期存在的血管系統十分困難,這主要是由于血管內皮細胞(ECs)和神經細胞(視網膜細胞)的培養方案互不兼容:內皮細胞的管腔結構和活性要求添加高濃度的血管內皮生長因子(VEGF)和專用的內皮培養基(如EGM-2)。然而,這種培養基環境對視網膜神經元的成熟是有害的,長期高濃度的VEGF甚至會導致視網膜組織的病理變化

因此,該研究明確提出“瞬時血管支持”的概念。試圖通過讓內皮細胞在早期形成一段時間的血管樣網絡,幫類器官核心區緩解缺氧與凋亡壓力,從而顯著提升RGC的長期存活率并促進其功能成熟。

具體而言,他們利用轉錄因子ETV2.2誘導人誘導多能干細胞(hiPSCs)定向分化為內皮細胞(ECs),并在第7天胚狀體成型后,再置于預分化好的內皮細胞單層上,從而成功誘導內皮細胞遷移并整合入類器官內部,形成PECAM1陽性的血管樣網絡。這些結構在形態上具備管腔特征,但并不等同于成熟血管,其存在時間隨類器官發育逐步縮短。

實驗觀察到,這些內皮細胞在類器官內表現出極高的組織能力。在第4至8周,PECAM1陽性的細胞形成了典型的血管樣分支結構,隨后在第10周達到約74.22 ± 5.85 μm的平均長度,隨后長度與面積逐漸下降,在第22周仍可檢測到殘留信號。這一動態變化本身提示,該系統并非依賴持續血管灌流維持組織,而是在鍵發育窗口內降低缺氧與細胞凋亡壓力?;铙w缺氧成像也證實,血管化類器官(vROs)內部的缺氧程度顯著降低。

最后,隨著培養進入中后期(約12周后),為了讓視網膜的光感受器和雙極細胞順利成熟,研究者必須切換回神經系統專用的成熟培養基。由于缺乏持續的血管營養因子支持,這些已經形成的微血管網會逐漸退化。這種“瞬時血管化”的設計其實是一種精妙的平衡:在類器官發育最快、對氧氣最渴求的早期階段(即內部最容易因缺氧而導致RGCs凋亡的階段),提供血管支持來“救命”;等RGCs度過了最脆弱的時期并建立起初步結構后,再撤掉血管支持,讓神經回路在純凈的神經環境中發育。

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圖:將內皮細胞(ECs)與視網膜類器官(ROs)進行整合

 

02 瞬時血管網路保護RGCs

增加類器官體積

vROs的直徑在各個觀察節點均顯著大于對照組,并在第12周左右達到峰值。且該差異并非由類器官融合率增加導致。

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圖:血管化特征的表征,及其對類器官的影響

抑制早期細胞凋亡,推遲RGCs丟失

更重要的是,血管化顯著降低了早期凋亡水平,從而推遲了視網膜神經節細胞的消失時間。流式細胞術檢測顯示,從第12周起,vROs中的Annexin V陽性早期凋亡細胞比例大幅下降。這一差異在第17周和第26周尤為明顯,提示血管樣結構在延緩發育中后期細胞死亡方面發揮作用。在第18周的統計中,vROs中的POU4F1陽性RGCs比例竟然維持在18.2% ± 4.31%,相較于對照組的1%左右,存活率提升了近二十倍。

RT-qPCR結果表明,POU4F1與SLC17A6的轉錄水平在第9周后不再上升,但在第16周及以后,血管化類器官中的表達量始終高于對照組,說明血管支持并未延長神經節細胞分化過程,而是顯著延緩了其丟失。

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圖:vRO 中的 RGC 存活率增強

驗證:RGCs的長期存活與血管化有關

單細胞與單核RNA測序則顯示,血管化類器官中額外富集了一類占比約4.2%的血管相關細胞群,對照組僅為0.7%,且該細胞群比例與神經節細胞比例呈顯著正相關(Spearman r = 0.89,p = 0.007),指向血管相關微環境與神經節細胞長期存活之間的直接關聯

 

03 微流控陣列增強RGCs功能性

僅僅依靠血管化解決營養供應并不足以構成有效模型。研究者推測,RGCs在類器官中的退化可能也與其軸突無法定向生長、缺乏靶標連接有關。

為此,他們設計了一個巧妙的集成平臺:將血管化類器官置入帶有微流控裝置的多電極陣列(MEA)芯片中。該裝置通過PDMS微通道引導RGC軸突從類器官中向外延伸,模擬了體內視神經纖維層的定向排列,為軸突提供了機械張力和結構支撐。此外還通過與微電極直接接觸,實現了無損、長期的電生理記錄。

結果發現,在微流控的“導航”和血管化的“補給”雙重加持下,RGCs不僅活了下來,還實現了功能上的飛躍。單細胞測序預測顯示,vROs中處于“命運確定”狀態的成熟RGC比例達到52%,遠高于對照組的36%。電生理記錄證實,這些RGCs不僅表現出穩定的自發放電,更在第20周后表現出持久的神經網絡活動,而此時的對照組類器官通常已經失去了功能信號。

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圖:RO中自發和光遺傳誘發的 RGC 活動

復雜視覺光響應信號的復現

這項研究最令人振奮的成果在于,這些培養超過30周的血管化類器官展現出了由光感受器驅動的復雜回路電活動。通過光刺激,研究人員在RGC水平上檢測到了經典的ON、OFF以及ON-OFF型反應。其中,ON-OFF神經元在470 nm和580 nm光脈沖下表現出最強的響應,峰值頻率分別超過237 Hz和281 Hz。三類神經元的反應延遲分別集中在20–36 ms、130–187 ms以及中間區間,構成典型的功能分化譜系

這種具有時序差異和功能分化的信號傳遞,證明了類器官內部已經建立了從光感受器到雙極細胞再到RGCs的垂直功能回路。這是目前體外視網膜模型所能達到的最高功能化水平之一。且ON與ON-OFF型神經元在超過90%的光脈沖中產生穩定響應,而OFF型神經元的響應比例分別為72%和53%,高度符合體內視網膜生理特征。

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圖:PR驅動的光響應

 

04 早產兒視網膜病變(ROP)病理模型

除了優化模型,研究團隊還展示了血管化類器官在模擬人類疾病方面的巨大潛力。他們通過降低氧濃度(4% O2)并添加血管內皮生長因子(VEGF),在類器官中成功模擬了早產兒視網膜病變(ROP)的核心病理特征:病理性新生血管生成。

在誘導缺氧的條件下,vROs展現出顯著的血管重塑,PECAM1和vWF等血管標記物的mRNA表達量大幅上調。這種模型為研究缺氧如何驅動異常血管增生,以及篩選針對ROP或其他增殖性視網膜病變的藥物提供了極其寶貴的類人平臺。

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圖:缺氧誘導的vROs心血管形成模擬了ROP病理特征

 

05 總結

總的來說,這項研究通過“瞬時血管化”與“軸突引導”的生物工程組合拳,不僅延長了類器官中RGCs的保鮮期,更將其功能成熟推向了新的高度。它告訴我們,類器官研究正在從單純的細胞自組織向復雜的系統集成演進。未來,通過進一步完善流體動力學模擬和神經靶標整合,這種“血管化”的類器官有望成為精準醫學和再生醫學中不可或缺的實驗基石。

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NovoMatrix® Organoids Validated,GFR

NMO-G010

10ml

類器官專用

NovoMatrix® Organoids Validated, GFR, Phenol-red Free

NMO-G005-PF

5ml

類器官專用

NovoMatrix® Organoids Validated, GFR, Phenol-red Free

NMO-G010-PF

10ml

類器官專用

NovoMatrix® Stem Cell Validated

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5ml

干細胞專用

NovoMatrix® Stem Cell Validated

NMS-G010

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NovoMatrix® High Concentration

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NovoMatrix® High Concentration

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參考資料

Sharma K, Habibey R, Ribeiro MM, et al. Retinal ganglion cell survival and functional maturation in transiently vascularized human retinal organoids. Cell Stem Cell. Published online January 12, 2026. doi:10.1016/j.stem.2025.12.013

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