類器官課堂 | 手把手掌握類器官基因編輯(操作篇)-技術(shù)前沿-資訊-生物在線

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類器官課堂 | 手把手掌握類器官基因編輯(操作篇)

作者:蘇州近岸蛋白質(zhì)科技股份有限公司 2026-06-23T00:00 (訪問量:7360)

反復(fù)調(diào)試參數(shù)、類器官批量死亡、編輯效率低迷?類器官具有致密結(jié)構(gòu)以及細(xì)胞類型多樣的特征,使得類器官的基因編輯不同于傳統(tǒng)2D細(xì)胞編輯。

因此,類器官基因編輯實(shí)操篇來啦!全流程手把手解說、疑難問題解答,帶你速通類器官基因編輯的實(shí)操應(yīng)用。

 

類器官基因編輯實(shí)驗(yàn)流程

本流程以人胎兒肝細(xì)胞類器官為例,采用電穿孔轉(zhuǎn)染法,適用于質(zhì)粒及RNP形式的CRISPR工具,全程約6-8周[1]

01 DNA/RNP混合物制備(15 min)

  1. 將敲除/敲入所需質(zhì)粒加入1.5 mL無菌離心管,每反應(yīng)最多使用20 μg DNA(溶于20 μL PBS);

  2. 若使用RNP復(fù)合物,按Cas9:gRNA=1:1-1:5的摩爾比混合[2]。室溫孵育15 min,確保RNP充分形成

    ps:質(zhì)粒摩爾比需根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康恼{(diào)整,RNP孵育時(shí)間不可過長,避免活性降低。

02 類器官樣本制備(1-2 h)

  1. 選取傳代后4-5天、直徑100-200 μm的類器官(12孔板至少2孔);

  2. 吸棄培養(yǎng)基,每孔加1 mL預(yù)冷Wash Buffer清洗;

    ps:Wash Buffer: 500 mL AdDMEM/F12 培養(yǎng)基中加入5 mL 10,000 U/mL青霉素-鏈霉素溶液、5 mL 1 M HEPES和5 mL 100× GlutaMAX 補(bǔ)充劑。

  3. 吹散基質(zhì)膠滴,將混合物轉(zhuǎn)移至15mL離心管,4℃ 400 g離心5 min;

  4. 棄上清,加2 mL 的Accutase重懸,37℃水浴孵育3-5 min并間斷吹打;

  5. 顯微鏡下確認(rèn)解離為單細(xì)胞或小細(xì)胞團(tuán)后,加10 mL冰冷Wash Buffer終止消化;

  6. 4℃ 400 g離心5 min,重復(fù)清洗2次,最終用130 μL的 Opti-MEM重懸;

  7. 加入制備好的DNA/RNP混合物,室溫孵育3 min。

    ps:解離前需測試細(xì)胞生長能力,若單細(xì)胞生長差,可保留小細(xì)胞團(tuán);所有離心步驟需4℃進(jìn)行,保護(hù)細(xì)胞活性。

03 電穿孔轉(zhuǎn)染(1-2 h)

  1. 將細(xì)胞混合物轉(zhuǎn)移至電穿孔比色皿中;

  2. 設(shè)置NEPA21電轉(zhuǎn)儀參數(shù):穿孔脈沖:175 V,7.5 ms,間隔50 ms,2次脈沖,轉(zhuǎn)移脈沖:20 V,50 ms,間隔50 ms,5次脈沖;

  3. 電轉(zhuǎn)后立即加入750 μL Isolation HEP培養(yǎng)基,室溫恢復(fù)20 min;

    ps:Isolation HEP培養(yǎng)基:100mL HEP 培養(yǎng)基,添加 ROCK 抑制劑(Y-27632),使其最終濃度為10 μM。

  4. 轉(zhuǎn)移至含8 mL預(yù)冷Wash Buffer的離心管,4℃ 400 g離心5 min;

  5. 用適量基質(zhì)膠重懸細(xì)胞,滴入預(yù)熱的培養(yǎng)皿,37℃培養(yǎng)箱放置30 min使膠凝固;

  6. 加入預(yù)熱的Isolation HEP培養(yǎng)基,放回培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

    ps:基質(zhì)膠需全程冰存防止凝固;不同品牌電轉(zhuǎn)儀參數(shù)差異大,需提前優(yōu)化。

04 類器官篩選與克隆建立(6-8周)

  1. 電轉(zhuǎn)24 h后:觀察細(xì)胞狀態(tài),若轉(zhuǎn)染熒光質(zhì)粒,可檢測GFP/mCherry陽性信號;

  2. 3-5天后:更換為普通HEP培養(yǎng)基,此時(shí)可見小細(xì)胞團(tuán)形成;

  3. 7-12天后進(jìn)行初步篩選:

    1. 熒光篩選:挑選熒光陽性類器官;

    2. 藥物篩選:添加10 μM的Nutlin-3a(TP53突變)或100 ng/mL的Hygromycin B(抗性基因);

  4. 10-20天后:挑取直徑>100 μm的陽性類器官,用Accutase輕微解離后擴(kuò)大培養(yǎng);

  5. 4-6周后:類器官直徑達(dá)100-250 μm,可進(jìn)行傳代或后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

05 單細(xì)胞FACS分選(4 h)

電轉(zhuǎn)3-5天后,若類器官單細(xì)胞生長能力良好,可通過FACS分選富集陽性細(xì)胞:

  1. 將類器官解離為單細(xì)胞,用2 mL冰冷Wash Buffer重懸;

  2. 100 μm濾器過濾至FACS管,4℃ 400 g離心5 min;

  3. 500 μL FACS緩沖液重懸,分選陽性細(xì)胞;

  4. 將分選細(xì)胞用基質(zhì)膠接種于24孔板,用Isolation HEP培養(yǎng)基培養(yǎng)。

 

培養(yǎng)鑒定:如何確認(rèn)編輯成功?

關(guān)鍵鑒定方法

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典型結(jié)果展示

  • 電轉(zhuǎn)2天后:明視野下可見存活細(xì)胞團(tuán),熒光視野下觀察到瞬時(shí)熒光信號。

  • 篩選2周后:藥物篩選組可見耐藥類器官存活,對照組完全死亡。

  • 克隆建立后:形成形態(tài)均一、大小穩(wěn)定的基因編輯類器官系。

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圖1 電轉(zhuǎn)染后的類器官[1]

 
電穿孔2d后肝細(xì)胞類器官生長的代表性明視野和熒光圖像(圖a和圖d),以及典型的電穿孔效率。根據(jù)基因敲除產(chǎn)生的熒光表達(dá)來挑選長出的類器官(圖b和圖c),或者也可以應(yīng)用耐藥性來富集基因組編輯的類器官。藍(lán)色的“√”代表熒光陽性或耐藥的器官組織;紅色符號代表未通過藥物選擇的器官組織。由單個(gè)挑取的類器官建立的克隆系的代表性圖像(圖e和圖f)。

 

問題排查

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類器官基因編輯產(chǎn)品解決方案

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在基因編輯應(yīng)用場景可提供CRISPR/Cas系統(tǒng)的RNP體系開發(fā)的Cas蛋白及其突變體,再加上通用型一步法sgRNA體外轉(zhuǎn)錄試劑盒,快速制備CRISPR/Cas系統(tǒng)所需的兩大元件,可以實(shí)現(xiàn)即時(shí)快速的基因編輯。

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基因編輯產(chǎn)品推薦

參考文獻(xiàn)

[1] Hendriks, D., Artegiani, B., Hu, H., Chuva de Sousa Lopes, S. & Clevers, H. Establishment of human fetal hepatocyte organoids and CRISPR-Cas9-based gene knockin and knockout in organoid cultures from human liver. Nat Protoc 16, 182–217 (2021).

[2] Seki, A. & Rutz, S. Optimized RNP transfection for highly efficient CRISPR/Cas9-mediated gene knockout in primary T cells. J Exp Med 215, 985–997 (2018).

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