反復(fù)調(diào)試參數(shù)、類器官批量死亡、編輯效率低迷?類器官具有致密結(jié)構(gòu)以及細(xì)胞類型多樣的特征,使得類器官的基因編輯不同于傳統(tǒng)2D細(xì)胞編輯。
因此,類器官基因編輯實(shí)操篇來啦!全流程手把手解說、疑難問題解答,帶你速通類器官基因編輯的實(shí)操應(yīng)用。
類器官基因編輯實(shí)驗(yàn)流程
本流程以人胎兒肝細(xì)胞類器官為例,采用電穿孔轉(zhuǎn)染法,適用于質(zhì)粒及RNP形式的CRISPR工具,全程約6-8周[1]。
01 DNA/RNP混合物制備(15 min)
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將敲除/敲入所需質(zhì)粒加入1.5 mL無菌離心管,每反應(yīng)最多使用20 μg DNA(溶于20 μL PBS);
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若使用RNP復(fù)合物,按Cas9:gRNA=1:1-1:5的摩爾比混合[2]。室溫孵育15 min,確保RNP充分形成
ps:質(zhì)粒摩爾比需根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康恼{(diào)整,RNP孵育時(shí)間不可過長,避免活性降低。
02 類器官樣本制備(1-2 h)
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選取傳代后4-5天、直徑100-200 μm的類器官(12孔板至少2孔);
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吸棄培養(yǎng)基,每孔加1 mL預(yù)冷Wash Buffer清洗;
ps:Wash Buffer: 500 mL AdDMEM/F12 培養(yǎng)基中加入5 mL 10,000 U/mL青霉素-鏈霉素溶液、5 mL 1 M HEPES和5 mL 100× GlutaMAX 補(bǔ)充劑。
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吹散基質(zhì)膠滴,將混合物轉(zhuǎn)移至15mL離心管,4℃ 400 g離心5 min;
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棄上清,加2 mL 的Accutase重懸,37℃水浴孵育3-5 min并間斷吹打;
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顯微鏡下確認(rèn)解離為單細(xì)胞或小細(xì)胞團(tuán)后,加10 mL冰冷Wash Buffer終止消化;
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4℃ 400 g離心5 min,重復(fù)清洗2次,最終用130 μL的 Opti-MEM重懸;
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加入制備好的DNA/RNP混合物,室溫孵育3 min。
ps:解離前需測試細(xì)胞生長能力,若單細(xì)胞生長差,可保留小細(xì)胞團(tuán);所有離心步驟需4℃進(jìn)行,保護(hù)細(xì)胞活性。
03 電穿孔轉(zhuǎn)染(1-2 h)
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將細(xì)胞混合物轉(zhuǎn)移至電穿孔比色皿中;
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設(shè)置NEPA21電轉(zhuǎn)儀參數(shù):穿孔脈沖:175 V,7.5 ms,間隔50 ms,2次脈沖,轉(zhuǎn)移脈沖:20 V,50 ms,間隔50 ms,5次脈沖;
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電轉(zhuǎn)后立即加入750 μL Isolation HEP培養(yǎng)基,室溫恢復(fù)20 min;
ps:Isolation HEP培養(yǎng)基:100mL HEP 培養(yǎng)基,添加 ROCK 抑制劑(Y-27632),使其最終濃度為10 μM。
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轉(zhuǎn)移至含8 mL預(yù)冷Wash Buffer的離心管,4℃ 400 g離心5 min;
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用適量基質(zhì)膠重懸細(xì)胞,滴入預(yù)熱的培養(yǎng)皿,37℃培養(yǎng)箱放置30 min使膠凝固;
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加入預(yù)熱的Isolation HEP培養(yǎng)基,放回培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
ps:基質(zhì)膠需全程冰存防止凝固;不同品牌電轉(zhuǎn)儀參數(shù)差異大,需提前優(yōu)化。
04 類器官篩選與克隆建立(6-8周)
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電轉(zhuǎn)24 h后:觀察細(xì)胞狀態(tài),若轉(zhuǎn)染熒光質(zhì)粒,可檢測GFP/mCherry陽性信號;
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3-5天后:更換為普通HEP培養(yǎng)基,此時(shí)可見小細(xì)胞團(tuán)形成;
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7-12天后進(jìn)行初步篩選:
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熒光篩選:挑選熒光陽性類器官;
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藥物篩選:添加10 μM的Nutlin-3a(TP53突變)或100 ng/mL的Hygromycin B(抗性基因);
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10-20天后:挑取直徑>100 μm的陽性類器官,用Accutase輕微解離后擴(kuò)大培養(yǎng);
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4-6周后:類器官直徑達(dá)100-250 μm,可進(jìn)行傳代或后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
05 單細(xì)胞FACS分選(4 h)
電轉(zhuǎn)3-5天后,若類器官單細(xì)胞生長能力良好,可通過FACS分選富集陽性細(xì)胞:
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將類器官解離為單細(xì)胞,用2 mL冰冷Wash Buffer重懸;
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100 μm濾器過濾至FACS管,4℃ 400 g離心5 min;
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500 μL FACS緩沖液重懸,分選陽性細(xì)胞;
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將分選細(xì)胞用基質(zhì)膠接種于24孔板,用Isolation HEP培養(yǎng)基培養(yǎng)。
培養(yǎng)鑒定:如何確認(rèn)編輯成功?
關(guān)鍵鑒定方法

典型結(jié)果展示
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電轉(zhuǎn)2天后:明視野下可見存活細(xì)胞團(tuán),熒光視野下觀察到瞬時(shí)熒光信號。
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篩選2周后:藥物篩選組可見耐藥類器官存活,對照組完全死亡。
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克隆建立后:形成形態(tài)均一、大小穩(wěn)定的基因編輯類器官系。

圖1 電轉(zhuǎn)染后的類器官[1]
問題排查

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參考文獻(xiàn)
[1] Hendriks, D., Artegiani, B., Hu, H., Chuva de Sousa Lopes, S. & Clevers, H. Establishment of human fetal hepatocyte organoids and CRISPR-Cas9-based gene knockin and knockout in organoid cultures from human liver. Nat Protoc 16, 182–217 (2021).
[2] Seki, A. & Rutz, S. Optimized RNP transfection for highly efficient CRISPR/Cas9-mediated gene knockout in primary T cells. J Exp Med 215, 985–997 (2018).
