CUT&Tag技術揭示RLI1調節磷酸鹽信號和生長機制-技術前沿-資訊-生物在線

CUT&Tag技術揭示RLI1調節磷酸鹽信號和生長機制

作者:蘇州近岸蛋白質科技股份有限公司 2022-08-18T16:42 (訪問量:12661)

磷(Pi)限制是制約作物生產的主要因素。為了更好地應對缺磷的壓力,植物在吸收和利用磷方面已經進化出多種適應機制,包括對磷的改變生長和磷饑餓信號的激活。然而,這些策略是如何協調的,目前的研究依然十分有限。

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2022年5月30日,中國農業科學院 易可可課題組在PLANT CELL上發表了名為Alternative splicing of REGULATOR OF LEAF INCLINATION 1 modulates phosphate starvation signaling and growth in plants的研究成果。

之前的研究表明,水稻的RLI1、GOLDEN2、ARR-B和Psr1 (GARP)亞家族轉錄因子可以調控葉片傾角,以應對不同的磷元素供應量?;蚪M注釋和公開的RNA測序數據表明,RLI1有兩種不同的轉錄變異。RT-PCR 和 WB結果表明RLI1有兩個轉錄變異體,可以在水稻中產生RLI1a和RLI1b亞型。 該研究發現在磷缺乏條件下RLI1a的轉錄被大幅度抑制,而RLI1b受到的影響較小(圖1A)。 在磷缺乏條件下RLI1a蛋白水平顯著低于磷充足條件下 (圖1,B和C)。然而,RLI1b蛋白水平在磷缺乏條件下顯著提升,這些結果表明磷供給不足可能導致RLI1b表達上調。

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圖1 A, qRT-PCR分析RLI1a和RLI1b在野生型植物中的表達水平,在+ P (200 μM Pi)和-P (0 μM Pi)條件下生長。在+ P條件下生長10天的植株被轉移到+ P和-P條件下再生長10天。

B,免疫印跡分析+ P和-P條件下野生型植物RLI1a和RLI1b蛋白水平。

C,圖(B)中相對蛋白的定量水平;

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考慮到RLI1a和RLI1b對缺磷脅迫的反應不同,以及RLI1(本研究中RLI1a)在葉片傾角中對外部磷利用能力的應激能力,我們假設RLI1a和RLI1b可能在調節葉片傾角方面發揮不同的作用。

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因此,該研究在RLI1a- ox和RLI1b- ox兩種植物的縱向切片上測量了葉片節理細胞長度。RLI1a- ox -3的細胞長度顯著大于其他植物,而RLI1b- ox -1和WT之間沒有顯著差異(圖2,E和F)。這些結果表明,與RLI1a不同,RLI1b不影響葉片節理細胞長度來調節葉片傾角(圖2,E和F)。在-P條件下,rli1b - ox植株的葉片傾角也與WT相當。這些結果表明,PSI葉片直立性的產生與RLI1a的抑制有關,而與RLI1b的抑制無關。

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圖2 E, WT、rli1、RLI1a-Ox-3、RLI1b-Ox-1植株第2葉頂葉層節縱向剖面圖。比例尺,50 μm。F,葉片節理細胞長度。值表示平均值±SD (n = 30-50)。

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水稻RLI1b-Ox品系表現為葉尖壞死,是磷中毒的典型癥狀。出乎意料的是,RLI1a-Ox也顯示葉尖壞死(圖3A和圖4A)。通過對這些過表達系中磷含量的測量,證實了在磷充足條件下,RLI1a-Ox和RLI1b-Ox植株的地上部磷積累高于野生型,而在磷匱乏條件下這些差異顯著緩減小(圖4,B和C)。這些結果表明,RLI1a和RLI1b在水稻中都具有調控磷積累和調節磷匱乏信號的功能。

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圖3 A水培條件下WT、RLI1a過表達系(A - ox -3/7/10)和RLI1b過表達系(b-Ox-1/9/12)的表型表現分析。

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圖4A, WT與RLI1a過表達株系(A - ox -3/7/10)和RLI1b過表達株系(b-Ox-1/9/12)葉片的表型表現。在充足磷 (HP, 200 μM Pi)和缺乏磷 (LP, 5 μM Pi)條件下生長30天。主分蘗頂部的第三片葉子用于分析。B和C, 在HP和LP條件下WT, a-Ox和b-Ox的磷的測量值。FW表示新鮮重量。值表示平均值±SD,重復3次。

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鑒于RLI1a和RLI1b對R1BS (RLI1a binding site, NAKATNCN)和P1BS(PHR1 binding site,GNATATNC) 表現出不同的DNA結合親和力,假設RLI1a和RLI1b可能在體內優先靶向不同的基因。為了驗證這一假設,我們對35SRLI1a-FLAG和35S-RLI1b-FLAG苗期植株采用CUT&Tag技術進行了基因組表觀分析,然后進行了高通量測序。測序數據顯示,與RLI1b相比,RLI1a在體內結合更多的DN**段,有11417個DNA結合峰值,而RLI1b只有3415個峰值(圖5,A和B)。其他候選靶基因相關序列位于峰值的上游3k bp內至下游1k bp處。正如轉錄因子所期望的那樣,RLI1a和RLI1b經常結合在基因的轉錄起始位點(TSSs)附近。RLI1a靶向6716個基因,而RLI1b只靶向水稻基因組中的2884個基因(圖5C)。其中2047個基因是RLI1a和RLI1b的共同靶基因,4669個基因和837個基因分別是RLI1a和RLI1b的共同靶基因(圖5)。這些結果表明,在體內RLI1a比RLI1b具有更廣泛的靶基因范圍。

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圖5 在體內,RLI1a比RLI1b具有更廣泛的靶標。A、RLI1a和RLI1b在染色體不同位置的峰數。從含有RLI1a-FLAG和RLI1b-FLAG的轉基因植物的嫩枝中分離細胞核,使用CUT&Tag試劑盒(NovoNGS)進行ChIP-seq分析。B, RLI1a和RLI1b靶向的峰總數。誤差條為SD (n = 2)。C,表示RLI1a和RLI1b靶向基因重疊的Venn圖。這些數字代表RLI1a或RLI1b直接靶向的基因數量。BR生物合成和信號轉導相關基因或磷內穩態和信號轉導相關基因。

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該研究中使用的CUT&Tag試劑盒來自近岸蛋白,近岸蛋白的NovoNGS? CUT&Tag 3.0 High-Sensitivity Kit已助力多篇高分文章發表,是您表觀遺傳研究的得力助手!

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產品名稱

N256A

NovoNGS? DNA Library Prep Kit for Illumina?

N259-YH01

NovoNGS? CUT&Tag 3.0 High-Sensitivity Kit (for Illumina?)

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考慮到RLI1a而非RLI1b調控葉片傾角,且在RLI1a ChIP-Seq數據中檢測到許多BL生物合成和信號基因,我們推測,RLI1a直接調控 brassinolide (BL)相關基因的表達,從而調節BL含量和信號,從而影響水稻生長。為了驗證這一假設,我們設計了針對BL生物合成基因啟動子(D11、DWF4、BZR1)的特異性引物,并將其用于ChIP-qPCR分析。和陽性對照相似,在D11、DWF4和BZR1 pro位點檢測到顯著富集的RLI1a- flag而非RLI1b- flag(圖6A),表明RLI1a與這些啟動子結合,可能影響D11、DWF4和BZR1在體內的表達。

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圖6 A, ChIP-qPCR分析D11、DWF4、BZR1、BU1啟動子上RLI1a和RLI1b的表達水平。

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另外,與不同品系間BL含量的差異以及激活BL信號的是RLI1a而不是RLI1b的觀點一致,在對照條件下以及在BL和brassinazole (BRZ,一種BL生物合成特異性抑制劑tor)處理下,RLI1b- ox的葉片傾角與WT相似。這些結果表明,RLI1a直接調控BL生物合成基因的表達,從而調節BL內穩態和信號轉導,進而影響水稻生長。

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該研究還從20種具有代表性的陸地植物中構建了MYBCC蛋白的系統發育樹,并在被子植物中發現了RLI1特異的分支。對這支枝的基因進行結構分析,預測大多數基因會發生類似的AS類型與水稻RLI1類似,在擬南芥、大豆和玉米中檢測到兩個編碼假定的MYB和MYB- cc蛋白的轉錄亞型。這些結果表明,RLI1樣基因的AS在雙子葉和單子葉中都是保守的。

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產品名稱

N256A

NovoNGS? DNA Library Prep Kit for Illumina?

N259-YH01

NovoNGS? CUT&Tag 3.0 High-Sensitivity Kit (for Illumina?)

M059-YH01

NovoNGS? ChiTag? pAG-Transposome

M058-YH01

NovoNGS? ChiTag? pAG-Transposase

N251

NovoNGS? Concanavalin A-coated Magnetic Beads

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