1、如何配置DSS溶液？ 

用無菌水配置DSS到所需濃度，建議使用0.22μm的過濾膜過濾。

2、DSS可以高壓滅菌嗎？

不可以，高壓滅菌會導致DSS分子結構發生變化。

3、DSS造模方案包括哪些？

自由飲、口服、或灌胃給藥。

4、每天給大鼠和小鼠飲水量體積是多少（包含急性和慢性造模）？

小鼠（20~25g）每只每天7~10ml，大鼠（100 g）每只每天10~11ml。

5、小鼠急性和慢性造模濃度？造模周期？

急性造模：3%~5%，周期：7天左右；慢性造模：1%~3%，周期：9周左右。

6、DSS可用于哪些動物造模？ 

鼠、大鼠、倉鼠、豚鼠或豬、兔、斑馬魚、果蠅等。

7、影響DSS造模成功的關鍵因素有哪些？

DSS濃度、分子量、給藥時間以及動物種屬。

8、慢性結腸炎造模過程中，為什么第二階段誘導總是慢于第一階段？

第一階段誘導后DSS耐受水平會提高，癥狀出現緩慢或較輕是常見的。若想要縮短第二階段誘導周期，可以適當提高DSS濃度。

9、DSS和TNBS均是結腸炎模型，兩者有什么區別？

DSS誘發潰瘍性結腸炎，TNBS誘發克羅恩病結腸炎。

10、3%的DSS，小鼠飲用了三天，沒有明顯的體重下降現象。

這屬于正?，F象，有些動物反應較慢，甚至飲用DSS的第5天才出現體重下降。若是第7天還未出現明顯癥狀，建議重新提高DSS濃度到3.5%~5%。

11、如何灌喂造模？

每天分別于10:00,14:00和18:00給予2%的DSS溶液灌喂，每次30ml/kg,不另外補水。每次最后以一次灌喂后給予足量混合配方顆粒飼料，次日8:00取走飼料。連續造模9天即可。

12、DSS造模后，會有小腸出血現象正常嗎？

DSS濃度過高會導致小腸出血，輕度小腸出血無副作用，若出血過多，建議降低DSS的濃度。

13、DSS飲水后，小鼠體重明顯降低，但是病理切片HE染色沒有炎癥現象？

DSS的應用達到一定的閾值才能成功誘導腸炎，閾值如果但不到，出現體重下降，但是無炎癥表現是正?，F象。這時可以適當延長DSS飲水周期。

14、為什么同一籠小鼠出現的癥狀有差異？

動物之間存在著個體差異，以及飲用水量也不同，而且不同的動物對DSS的耐受性也不同。

15、DSS造模期間是否可以不同時間點檢測，以及觀察DSS造模前期，什么時候會造成上皮屏障破壞？

可以在不同時間點檢測。一般2天造成上皮屏障破壞，可以選擇在3,5,7天，進行病理檢測。

16、為什么不同批次的DSS使用濃度會有差異？

DSS是葡聚糖聚合物，分子量是平均分子量，每個批次之間會存在分子量的差異，而分子量對結腸炎造模有影響。通常批次間比較穩定，但少部分也會存在差異。建議客戶根據實驗需求，購買足夠的同一批次的產品，或者使用批次之前進行預實驗。

17、造模成功的指標有哪些？

1）疾病活躍指數評分（DAI）：體重、糞便粘稠度、糞便潛血等指標

2）組織學變化評分：標準方法為H&E染色

3）結腸長度：急性結腸炎模型中，第8天可檢測到結腸長度縮短；慢性結腸炎模型中，結腸長度縮短更加明顯。

18、造模失敗的原因？

DSS造模會受到多種因素影響，包括小鼠類型、DSS分子量、DSS濃度、給藥周期等。

其中，DSS濃度是影響造模成功最主要的因素。

失敗可能的原因：DSS濃度過低、給藥時間短、小鼠未飲用到DSS。

解決方案：1）提高DSS濃度（有文獻報道最高可用10% DSS給藥）；2）延長給藥周期，

可持續給藥7-10天；3）觀察是否出現漏水、瓶口堵塞等情況。

19、造模成功率低的原因？

DSS造模影響因素：動物種屬、給藥時間、DSS濃度、DSS分子量等。動物種屬、動物大小及性別：不同的遺傳背景可能引起DSS易感性不同。DSS模型可采用小鼠、大鼠、倉鼠和豚鼠造模, 但各種屬動物對DSS易感性、臨床表現、炎癥嚴重程度和病變部位不同。建議以6-8周，體重18g以上的小鼠為建模對象。

造模成功率低的可能原因：小鼠間個體背景差異、飲用DSS量差別較大、DSS含硫量較低或DSS分子量較大等原因。

解決方案：1、盡量使用相同性別、大小、體重的小鼠；2、保證每籠小鼠數量在3-5只，避免過多；3、確保每瓶DSS飲用水足量，且不可阻塞；4、DSS質量也較為重要。

20、小鼠死亡率高的原因？

可能的原因：DSS濃度過高、給藥周期過長建議：降低DSS濃度（有文獻報告，可使用1-2%濃度DSS建立急性腸炎）；減少給藥周期（有文獻報告，可使用4-7天的給藥周期）。

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